ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات غلظت هورمون ملاتونین تحت اثر سن و فصل در نریان عرب
زمینهمطالعاتی: هورمون ملاتونین به عنوان هورمون فتوپریودیک نقش بسزایی در فعالیت تولیدمثلی حیوانات مزرعهای، از جمله نریان دارد. هدف: این آزمایش به منظور بررسی تغییرات غلظت هورمون ملاتونین در سه رده سنی 2 تا 6، 6 تا 10 و 10 تا 14 سال، تحت فتوپریود طبیعی در منطقه دزفول بود. روشکار: خونگیری از ورید وداج 33 رأس نریان اصیل عرب، در فصول تابستان (تیرماه) و زمستان (دیماه) سال 1391 انجام شد. غلظت هورمون ملاتونین با دستگاه HPLC اندازهگیری شد. مقایسه فراسنجه مذکور بین فصول تابستان و زمستان توسط آزمون T و تفاوت آنها در دو فصل، در سه رده سنی با تجزیه واریانس (ANOVA) یکطرفه و آزمون چند دامنهای دانکن با استفاده از برنامه نرم افزار SPSS مورد آنالیز قرار گرفت. نتایج: میانگین غلظت ملاتونین سرم خون بین فصول تابستان و زمستان دارای تفاوت آماری معنیداری نمیباشد (05/0P>). در هر دو فصل میانگین غلظت ملاتونین در نریانهای 2 تا 6 ساله به صورت معنیداری بیشتر از 6 تا 10 و 10 تا 14 سالهها بود (05/0P<). نتیجهگیری نهایی: نتایج نشان داد که در نریان عرب، فصل تأثیری بر غلظت ملاتونین سرم خون ندارد ولی با افزایش سن غلظت ملاتونین کاهش مییابد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7268_b91b3f85ff3e5da0fefb06bd1051ffae.pdf
2018-02-20
1
10
سن
فصل
ملاتونین
نریان عرب
خلیل
میرزاده
kh_mirzadeh@yahoo.com
1
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
عارف
مداحی
yavarmaddahi@yahoo.com
2
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
LEAD_AUTHOR
مرتضی
ممویی
3
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
حسین
نجفزادهورزی
4
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
Altinsaat C, Aykut GU, Nesrin S and Ahmet E, 2009. Seasonal variation in serum concentration of melatonin, testosteron and progesteron in Arabian horse. Ankara University Veterinary Faculty. Department of Obstetrics and Gynaecology. Veteriner Fakultesi dergisi 56(1): 19-24.
1
Arendt G, 2005. Melatonin: characteristics concerns and prospects. Journal of biological Rhythms 20: 291-303.
2
Baker FC and Driver HS, 2007. Circadian rhythms, sleep, and the menstrual cycle. Sleep Medicine journal 8: 613-622.
3
Barry P, Fitzgerald BP and Mcmanus CG, 2000. Photoperiodic versus metabolic signals as determinants of seasonal anestrus in the mare. Biology of Reproduction 63: 335-340.
4
Bechgaard E, Lindhardt K and Martinsen L, 1998. High-performance liquid chromatographic analysis of melatonin in plasma with fluorescence detection. Clinical Chemistry 39: 2242-2247.
5
Ben Saad MM and Maurel DL, 2004. Reciprocal interaction between seasonal testis and thyroid activity in Zembra island wild rabbits (Oryctolagus cuniculus): Effects of Castration, Thyroidectomy, Temperature, and Photoperiod. Biology of Reproduction 70: 1001–1009.
6
Bradshaw WE and Holzapfel CM, 2007. Evolution of animal photoperiodism. The Annual Review of Ecology Evolution and Systematic 38: 1-25.
7
Casao A, Cebrian I, Eoda Asumpçao M, Perezpe R, Abecia GA, Forcada F, Perez GC and Blanco TM, 2010. Seasonal variations of melatonin in ram seminal plasma are correlated to those of testosterone and antioxidant enzymes. Reproductive Biology and Endocrinology. pp. 107-109.
8
Cigdem A, Aykut GU, Nesrin S and Ahmet E, 2009. Seasonal variations in serum concentration of melatonin, testosterone and progesterone in Arabian horse. Ankara University Veterinary Faculy. Department of Obstetrics and Gynaecology 56: 19-24.
9
Clay CM and Clay GN, 1992. Endocrine and testicular changes associated with season, artificial photoperiod, and the peri-pubertal period in stallions. Veterinary Clinics of North America Equine Practics 8: 31-56.
10
Davies Morel MCG, 2002. Equine reproductive physiology, breeding and stud management. 2th Ed Cabi Publishing New York .pp. 44-45.
11
Diekman MA, Braun W, Peter D and Cook D, 2002. Seasonal serum concentration of melatonin in cycling and non-cycling mares. Journal of Animal Science 80: 2949-2952.
12
Elkon II, Heleil BA and Mahmud SA, 2011. Effect of age and season on the testicular sperm reserve and testosterone profile in camel (camels dromedaries). Animal Science Reproduction 8: 68-72.
13
Elliott SB 2010. Effects of pituitary pars intermedia dysfunction (PPID), season, and pasture diet on blood adrenocorticotropic hormone and metabolite concentrations in horses. University of Tennessee – Knoxville. PP. 82-88.
14
Gerlach T and Aurich GE, 2000. Regulation of seasonal reproductive activity in the stallion, ram and hamster. Anim Reprod Science 58: 197-213.
15
Guerin MV, Deed GR, Kennaway DG and Matthews CD, 1995. Plasma melatonin in the horse: measurements in natural photoperiod and in acutely extended darkness throughout the year. Journal of Pineal Research 19: 7-15.
16
Guillaume D, Zarazaga LA, Malpaux B and Chemineau P, 2006.Variability of plasma melatonin level in pony mares (Equus caballus), comparison with the hybrid: mules and with jennies (Equus asinus). Reproduction Nutrition Development 46: 633-639.
17
Gupta M, Kohli K, Kumar D and Gupta YK, 2006. A reverse phase high performance liquid chromatography method for simultaneous estimation of melatonin, carbamazepine epoxide and carbamazepine simultaneously in serum. Indian JPhys Pharmacol 50(4): 427-430.
18
Hafez B, Hafez ESE, 2009. Reproduction in farm animals 7 th edition. Lippincott Williams and Wilkins Philadelphia U.S.A pp: 408-452.
19
Hiebert SM, Green SA, Yellon SM, 2006 . Daily timed melatonin feedings mimic effects of short days on testis regression and cortisol in circulation in siberian hamsters. General and Comparative Endocrinology 146: 211- 216.
20
Huszenicza G, Nagy P, Juhasz G, Korodi P, Kulcsar M, Reiczigel G, Guillaume D, Rudas P and Solti L, 2000. relationship between thyroid function and seasonal reproductive activity in mares. Journal of Reproduction and Fertility Supplement 56: 163-172.
21
Itoh MT, Ishizuka B, Kuribayashi Y, Amemiya A and Sumi Y, 1999. Melatonin, its precursors and synthesizing enzyme activities in the human ovary Mol Hum. Molecular Human Reproduction 5: 402-408.
22
Kadunc N, Ljubljana U, Kosec M and Cestnik V, 2003. Serum thyroid and steroid hormone levels in Lipizzan horses. Animal physiology-Reproduction. Animal Physiology and Biochemistry. pp. 221-225.
23
Keefe DL and Turek FW, 1985. Circadian time keeping processes in mammalian reproduction. Oxf Rev Reproductine Biology 7: 346-400.
24
Maddahi Y, Mirzadeh K, Tabatabaei S, Mamouie M and Najafzadeh H, 2014. Studying the effect of age and season on the concentration of testosterone hormone and the size of scrotum circumference in Arabian Stallion. Journal of Animal Science Researches (Agricultural Science) 23(4): 151-158.
25
Matthews CD, Guerin MV and Deed GR, 1993. Melatonin and photoperiodic time measurement: Seasonal Breeding in the sheep. Journal of Pineal Research 14: 105–116.
26
Murphy BA, Elliott GA, Sessions DR, Vick MM, Kennedy EL and Fitzgerald BP, 2007. Rapid phase adjustment of melatonin and core body temperature rhythms following a 6-h advance of the light/dark cycle in the horse. Journal of Circadian Rhythm 24: 5 (1):5.
27
Nagy P, Guillaume D and Daels P, 2000. Seasonality in mares. Animal Reproduction Science 61: 245-262.
28
Najafzadeh H, Gooraninejad S, Gadrdan A, Fatemi R and Raki A, 2011. Determination Melatonin in Serum of Arbian Horses by HPLC in Summer and Winter Solstices in Ahvas. Word Applied Sciences Journal 12 (11): 2988-2091.
29
Peniston-Bird JF, Street CA, Kadva A, Stalteri MA and Silman RE, 1993. HPLC assay of Reciprocal interaction between seasonal testis and thyroid activity in Zembra island wild rabbits (Oryctolagus cuniculus): Effects of Castration, Thyroidectomy, Temperature and Photoperiod. Biology of Reproduction Journal 70: 1001–1009.
30
Stankov B, Cozzi B, Lucini V, Fumagalli P, Scaglione F and Fraschini F, 1991. Characterization and mapping of melatonin receptors in the brain of three mammalian species: rabbit, horse and sheep. A comparative in vitro binding study. Neuro-endocrinology Journal 53: 214-221.
31
Stevens RG, Blask DE, Brainard GC, Hansen G, Lockley SW, Provencio I and et al, 2007. Meeting report: the role of environmental lighting and circadian disruption in cancer and other diseases. Environ Health Perspect 115(9): 1357-1362
32
Wrench N, 2007. Effect of Season on Sperm Membrane Protein 22 and Selected mRNAs in Fresh and Cryopreserved Stallion Sperm. A Carolina State University in partial fulfillment. Animal Science Journal 66: 215-225.
33
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر کاهش کلسیم و فسفر جیره غذایی بههمراه ویتامین D3و یا عصاره رازیانه بر عملکرد تولید مثلی مرغ مادرگوشتی پس از تولکبری
زمینه مطالعاتی و هدف: این آزمایش بهمنظور بررسی اثرات سطوح مختلف کلسیم، فسفر بههمراه عصاره رازیانه و ویتامین D3 بر قابلیت جوجهدرآوری و خصوصیات کیفی جوجههای گله مادرگوشتی سویه تجاری راس 308 از سن 96 تا 102 هفتگی انجام شد. روش کار: آزمایش بهصورت طرح کاملا تصادفی شامل7 تیمار با 4 تکرار و 11 قطعه پرنده در هر واحد آزمایشی (10 مرغ و یک خروس) انجام شد. تیمارهای آزمایشی عبارت است از: 1-جیره غذایی متعادل (شاهد)، 2 و 3- جیره غذایی فاقد ویتامین D3 با 10 و 20 درصد کاهش در کلسیم و فسفر، 4 و 5- بهترتیب تیمار 2 و 3 بههمراه 20 در صد افزایش در ویتامینD3 ، 6 و7- بهترتیب تیمار 2 و 3 بههمراه 50 میلیگرم عصاره رازیانه. در طول آزمایش فراسنجههای از جمله جوجهدرآوری، تلفات جنینی، درصد جوجهخروس، وزن جوجهها و اجزاء تخمدان مورد ارزیابی قرار گرفت که اثر تیمارهای آزمایشی بر تلفات جنینی و وزن زرده متصل به تخمدان معنیدار بود. نتایج: نتایج نشان داد کاهش کلسیم، فسفر و ویتامینD3 (تیمار 2 و 3) باعث افزایش معنیدار تلفات جنینی شد، همچنین کاهش کلسیم و فسفر در تیمار سوم باعث کاهش معنیدار وزن زرده متصل به تخمدان شد (05/0 P<). افزودن ویتامینD3 به جیرههای غذایی با 10 درصد کمبود در میزان کلسیم و فسفر سبب جبران اثرات منفی کمبود کلسیم و فسفر بر تلفات ثانویه شد. افزودن عصاره رازیانه نیز توانست در تیمارهایی که کلسیم و فسفر آنها 10 درصد کمتر بود اثر بخش باشد اما اثر بخشی آنها به اندازه ویتامینD3 بر تلفات ثانویه نبود. نتیجه گیری نهایی: نتایج این آزمایش نشان داد که زمانی که جیره دچار کمبود کلسیم و فسفر شود استفاده از عصاره رازیانه می تواند به مانند ویتامینD3 باعث کاهش تلفات ثانویه جنین شود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7269_287cdf2fdefff7417b3076d048ae3e27.pdf
2018-02-20
11
21
عصاره رازیانه
فسفر
کلسیم
مرغ مادرگوشتی
ویتامین3D
محمد
کاظمی فرد
mo.kazemifard@gmail.com
1
گروه علومدامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
LEAD_AUTHOR
حسن
کرمانشاهی
kermansh@um.ac.ir
2
گروه علومدامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
منصور
رضایی
mrezaie2000@yahoo.com
3
گروه علومدامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
ابوالقاسم
گلیان
golian-a@um.ac.ir
4
گروه علومدامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
Albert-Puleo M, 1980. Fennel and anise as estrogenic agents. Journal of Ethnopharmacology 2: 337-344.
1
Bar A and Hurwitz S, 1979. The interaction between calcium and gonadal hormones in their effect on plasma calcium, bone 25-hydroxycholecalciferol-1-hydroxylase, and duodenal calcium binding protein, measured by radioimmunoassay in chicks. Endocrinology 104:1455–1460.
2
Baker DH, Biehl RR and Emmert JL, 1998. Vitamin D3 requirement of young chicks receiving diets varying in calcium and available phosphorus. British Poultry Science 39: 413.
3
Barnett DM, Kumpula BL, Petryk RL, Robinson NA, Renema RA and Robinson FE, 2004. Hatchability and early chick growth potential of broiler breeder eggs with hairline cracks. Journal of Applied Poultry Research 13: 65–70.
4
Boogard CL and Fnnengan CV, 1976. The effects of estradiol and progesterone on the growth and differentiation of the quail oviduct. Canadian Journal of Zoology 54: 324.
5
Bozkurt M, Alcicek A,Cabuk M, Kucukyilmaz K and Catli AU, 2009. Effect of an herbal essential oil mixture on growth, laying traits, and egg hatching characteristics of broiler breeders. Poultry Science 88: 2368–2374.
6
Burton FG and Tullett SG, 1982. A comparison of the effects of eggshell porosity on the respiration and growth of domestic fowl, duck and turkey embryos. Comparative Biochemistry and Physiology 75:167–174.
7
Christensen VL, 2001. Factors associated with early embryonic mortality. World’s Poultry Science Journal 57: 259–373.
8
Costa FGP, Oliveira FLS, Dourado LRB, Lima-Neto RC, Campos MASF and Lima AGVO, 2008. Níveiscalcium em dietas para poedeiras semipesadas após o pico de postura. Revista Brasileira de Zootecnia 37: 624-628.
9
El-Ghalid AH, 2009. Exogenous estradiol blood profile, productive and reproductive performance of female Japanese quails at different stage of production. Asian Journal of Poultry Science 3: 1-8.
10
Jensen EV and DeSombre ER, 1972. Mechanism ofaction of the female sex hormones. Annual Review of Biochemistry 41: 203-230.
11
Karimi-Torshizi M, 1996. Use of Phytase in the diet of broiler chicks. MSc thesis. Tarbiat Modares University 52-54. (In Persian).
12
Kazemifard M, Kermanshahi H, Rezaei M, Golian A and Hosseini SJ, 2017. Effect of different levels of calcium, phosphor and vitamin D3with fennel extract on, performance and egg shell quality in post molted Ross broiler breeder. Research on Animal Production 8(15):33-41. (In Persian).
13
Malini TG, Megala N, Anusya S, Devi K and Elango VV, 1985.Effect of Foeniculumvulgare Mill. Seed extraction the genital organs of male and female rats. Indian Journal of Physiology and Pharmacology 29: 21-26.
14
Mather CV, Anithakumari M and Laughlin KF, 1976. Storage of hatching eggs: The effect on total incubation period. British Poultry Science 17 (5): 471-479.
15
McDonald P, EdvardsRA, Greenhalgh HFD and Morgan GA, 1996. Animal Nutrition. 5 TH Ed. Longman, U.K.
16
Narushin VG and Romanov MN, 2002. Egg physical characteristics and hatchability. World’s Poultry Science Journal 58:297–303.
17
Ruiz J and Lunam CA, 2002. Effect of pre-incubation storage conditions on hatchability, chick weight at hatch and hatching time in broiler breeders. British Poultry Science 43:374-383.
18
Samar AE and Abd-Elhady AM, 2009. Exogenous estradiol: Productive and reproductive performance and physiological profile of Japanese quail hens. International Journal of Poultry Science 8: 634-641 Saeedi M, Ebrahimzadeh MA, Morteza M, Semnani AA and Rabiei K, 2010. Evaluation of antibacterial effect of ethanolic extract of eoeniculum vulgare mill. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences 77: 88-91
19
SAS Institute, 2003. SAS/STAT 9.1.3 User’s Guide. SAS Inst. Inc., Cary, NC.
20
Scanes CG, Brant G and Ensminger ME, 2004. Poultry Science. Pearson Prentice, Upper Saddle River, NJ.
21
Schimke RT, McKnight GS, Shapiro DJ, Sullivan D and Palacios R, 1975. Hormonal regulation of ov-albumin synthesis in the chick oviduct. Recent Progress in Hormonal Research 31: 175.
22
Seyfi-Abadi R, 1985. Determination of Biological Value of internal D-Calcium Phosphates and Comparison with Imported Nutrition Samples in Broiler Chickens. PhD Thesis. Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran 38-40. (In Persian).
23
Stevens VI, Blair R, Salmon RE and Stevens JP, 1984. Effect of varying levels of dietary vitamin D3 on turkey hen egg production, fertility and hatchability, embryo mortality and incidence of embryo malformations. Poultry Science 63:760–764.
24
Summers JD and Leesson S, 2009. Broiler breeder production. Nottingham University Press Manor Farm, Church Lane Thrumpton, Nottingham NG11 0AX, England.
25
Tanira MOM, Shah AH, Mohsin A, Ageel AM and Qureshi S, 1996. Pharmacological and toxicological investigations on F. vulgare dried fruit extract in experimental animals. Phototherapy Research 10: 33-36.
26
Tona K, Onagbesan O, Ketelaere B, Bruggeman V and Decupere E, 2007. A model for predicting hatchability as a function of flock age, reference hatchability, storage time and season. Archiv fur Geflugelkunde Journal 71:30–34.
27
Vieira SL, 2007. Chicken embryo utilization of egg micronutrients. Brazilian Journal of Poultry Science 9: 01 – 08.
28
Wallace RA, 1985. Vitellogenesis and oocyte growth in non-mammalian vertebrates. In Development Biology, 1, Oogenesis (ed. L. W. Browder). 127–177. New York: Plenum Press.
29
ORIGINAL_ARTICLE
توانایی یدک شدن آرژنین با گوانیدینواستیک اسید و تعیین نیاز آرژنین مرغ مادرگوشتی در انتهای دوره تولید
زمینه مطالعاتی: تعیین نیاز مجدد مواد مغذی و ارزش جایگزینی افزودنی های تجاری در جیره های کاربردی در جهت بهبود عملکرد مرغ مادر گوشتی هدف: این تحقیق به منظور ارزیابی مجدد نیاز آرژنین در جیرههای کاربردی مرغمادرگوشتی و امکان یدک شدن آرژنین توسط گوانیدینواستیک اسید (GAA) انجام شد. روش کار: آزمایش با 320 قطعه مرغ مادر سویه راس 308 به صورت فاکتوریل، شامل دو سطح GAA (صفر و 12/0درصد جیره غذایی) و چهار سطح آرژنین افزوده (0، 3/0، 6/0 و 9/0درصد جیره غذایی) در دوره سنی 54 تا 63 هفتگی انجام شد. نیاز آرژنین با استفاده از تابعیت خطی و غیرخطی برای صفات عملکردی از آرژنین خوراک تعیین شد. نتایج: اثر متقابل آرژنین و GAA بر قابلیت باروری معنیدار بود (05/0>P). تابعیت ایمونوگلوبولینG و نفوذ اسپرم در لایه پریویتلین از سطوح افزایشی آرژنین معنیدار بود (05/0>P). اثر آرژنین افزوده و GAA بر سرانه تخممرغ تولیدی و قابلجوجهکشی کل دوره (مرغ لانه) و وضعیت پوشش پر معنیدار نبود (05/0>P)، هرچند افزودن آرژنین باعث افزایش فراوانی پرندگان با پوشش کامل پر (امتیاز 5) شد و بیشترین سرانه تخممرغ تولیدی با افزودن 3/0درصد آرژنین همراه با گوانیدینواستیکاسید حاصل شد. با افزایش میزان آرژنین افزوده تا 6/0 و 9/0درصد، مدت زمان مصرف جیره روزانه به طور معنیدار تا دو برابر افزایش یافت. نیاز آرژنین قابلهضم برای سرانه کل تخممرغ تولیدی، سرانه کل تخممرغ قابلجوجهکشی، نفوذ اسپرم در لایهپریویتلین و ایمونوگلوبولینG با احتساب آرژنین جیره پایه به ترتیب 85/0، 87/0، 03/1 و 34/1 درصد برآورد شد، که بیش از میزان توصیه شده توسط راهنمای پرورش است. با اعمال 12/0درصد GAA، نیاز آرژنین افزوده برای موارد مزبور به ترتیب 02/1، 91/0، 00/1 و 27/1درصد برآورد شد. نتیجهگیری نهایی: براساس نتایج این آزمایش، مقدار آرژنین توصیه شده توسط راهنمای پرورش مرغمادرگوشتی سویه راس 308، تکافوی نیاز این پرنده را نمینماید و افزودن GAA، جایگزین بخشی از آرژنین برای صفت باروری شد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7270_65193efaf85c1c582f518c7d4327d36d.pdf
2018-02-20
23
34
مرغ مادر گوشتی
آرژنین
گوانیدینواستیکاسید
لیدا
اسمعیلی نیا
esmaily.lida@ut.ac.ir
1
علوم دامی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
مجتبی
زاغری
mzaghari@ut.ac.ir
2
علوم دامی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران
AUTHOR
سید ناصر
موسوی
snmousavi@hotmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین-پیشوا، ورامین، ایران
AUTHOR
AOAC, 2006. Official Methods of Analysis, 18thed. AOAC Int., Gaithersburg, MD.
1
Basiouni GF, 2009. The effect of feeding an extra amounts of arginine to Local. Saudi Hens on luteinizing hormone secretion. Journal of Biological Sciences 9(6):617-620.
2
Becker LJ and Rudback JA, 1979. Altered antibody responses in mice treated with toxins for macrophages. Journal of the Reticuloendothelial Society. 25:443-454
3
Bramwell RK, Marks HL and Howarth B, 1995. Quantitative determination of spermatozoa penetration of the perivitelline layer of the hen's ovum as assessed on oviposited eggs. Poultry science 74 1875-1883.
4
Dilger RN, Bryant-Angeloni K, Payne RL, Lemme A, and Parsons CM, 2013. Dietary guanidinoacetic acid is an efficacious replacement for arginine for young chicks. Poultry science 92:171–177
5
Fu WJ, Haynes TE, Kohli R, Hu J, Shi W and Spencer TE, 2005. Dietary l-argininesupplementation reduces fat mass in Zucker diabeticfatty rats. Journal of Nutrition 135: 714- 21.
6
Gharib HBA, Desoky AA, El-Menawey MA, Abbas AO, Hendricks GL and Mashaly MM, 2008. The role of photoperiod and melatonin on alleviation of the negative impact of heat stress on broilers. International Journal of Poultry science7(8):749-756.
7
Gumułka M and Kapkowska E, 2005. Age effect of broiler breeders on fertility and sperm penetration of the perivitelline layer of the ovum. Animal Reproduction Science 90: 135-148
8
Kafilzadeh F, Hojabri F, Sarwar A and Hajjarian H, 2010. Biology of domestic animal breeding, Razi University Kermanshah
9
Khajali F and Wideman RF, 2010. Dietary arginine: metabolic, environmental, immunological and physiological interrelationships. World's Poultry Science Journal, Vol 66.
10
Khalaji S, Zaghari M, Ganjkhanlou M and Ghaziani F, 2013 Evaluating the effects of using high viscosity Hydroxypropylmethylcellulose, Soy Isoflavone and Arginine to reduce the effects of obesity in broiler breed.Journal of Veterinary Research. 68, 3: 1-5
11
Leeson S and Summers JD,2001. Nutrition of the chicken. 4th ed. Guelph University Books-608pages.
12
Lemme A, Ringel J, Rostagno HS and Redshaw MS, 2007a. Supplemental guanidinoacetic acid improved feed conversion, weight gain, and breast meat yieldin male and female broilers. Pp.1-4. in Proc. XVI Eur. Symp. On Poultry Nutrition, Strasbourg, France.
13
Lemme A, Ringel J, Sterk A and Young JF, 2007b. Supplemental guanidinoacetic acid affects energy metabolism of broilers. Pp. 339-342 in Proc. XVI Eur. Symp. On Poultry Nutrition, Strasbourg, France.
14
Michiels J, Maertens L and Buyse J, 2012.Supplementation of guanidinoacetic acid to broiler diets: effects on performance, carcass characteristics, meat quality, and energy metabolism. Poultry Science 91:402-412.
15
Murakami AE, Rodrigueiro RJB, Santos TC, Ospina-Rojas IC and Radmacher M ,2013.: 19th European Symposium on Poultry Nutrition, Potsdam, Germany and internal report Evonik Brazil.
16
Reyes MC, Salas C and Coon CN, 2012. Metabolizable Energy Requirements for Broiler Breeder in Different Environmental Temperatures, International Journal of Poultry Science 11 (7): 453-461
17
Ringel J, Lemme A, Araujo LF, 2008. The effect of supplemental guanidine acetic acid in Brazilian type broiler diets at summer conditions Poultry science. 87(Suppl.1): 154.
18
Ross 308 Parent stock, 2013. Nutrition Specifications.
19
SAS Institute, 2002. SAS User’s Guide, Version 9 Edition. SAS Institute, Cary, NC, USA.
20
Sharide H, Esmaile nia L, Zaghari M, Zandi M, Akhlaghi A and Lotfi L, 2016. Effect of feeding guanidinoacetic acid and L-arginine on the fertility rate and sperm penetration in the perivitelline layer of aged broiler breeder hens. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 100: 316–322.
21
SikurVR, Robinson FE, Korver D R, Renema RA and Zuidhof M J, 2004. Effects ofnutrient density on growth and carcass traits in fast- and slow-feathering female turkeys. Poultry science 83:1507–1517.
22
Silva LMGS, Murakami AE, Fernandes JIM, Dalla Rosa D and Urgnani JF, 2012. Effects of dietary arginine supplementation on broiler breeder egg production and hatchability. Brazilian Journal of Poultry Science.
23
Zaghari M, Sedaghat V and Shivazad M, 2013. Effect of vitamin E on reproductive performance of heavy broiler breeder hens. The Journal of Applied Poultry Research 22: 808-813.
24
ORIGINAL_ARTICLE
اثر پسماند گیاهان دارویی بر فراسنجههای خونی، صفات کیفی تخم مرغ و پاسخهای ایمونولوژیک مرغهای تخم گذار تغذیه شده با نسبتهای متفاوت اسیدهای چرب امگا-6 به امگا-3
زمینه مطالعاتی: استفاده از پسماند گیاهان دارویی می تواند در جیره های مستعد پراکسیداسیون لیپیدی مفید واقع شود. هدف: این آزمایش به منظوربررسی اثر سطوح مختلف مخلوط پسماند گیاهان دارویی (تایموسولگاریس،منتا پیپریتا، رزمارینوس افیسینالیس و آنتوم گراوئولنس) در جیرههای غذایی با نسبتهای متفاوت اسیدهای چرب امگا-6 به امگا-3 بر فراسنجه های خونی، پایداری اکسیداتیو،صفات کیفی تخم مرغ و پاسخهای ایمنی مرغهای تخم گذار انجام پذیرفت. روش کار: در این پژوهش از 120 قطعه مرغ تخمگذار لگهورن سویه های-لاینW-36 (در سن 40 هفتگی) استفاده شد. مرغها به صورت تصادفی بین 6 تیمار آزمایشی، متشکل از 4 تکرار و 5 قطعه مرغ در هر تکرار و در قالب یک آزمایش فاکتوریل 3×2 بر پایه طرح کاملاً تصادفی اختصاص یافتند. نتایج: استفاده از جیرههای با نسبت پایین اسیدهای چرب امگا-6 به امگا-3، موجب افزایش غلظت مالون دی آلدهید سرم و شاخص رنگ زرده تخممرغ (05/0P<) و نیز کاهش فعالیت آنزیم آلکالین فسفاتاز (01/0P<)، غلظت تریگلیسرید پلاسما (05/0P<) و کلسترول زرده تخممرغ (01/0P<) گردید. تغذیه پرندگان با جیره های حاوی پسماندهای گیاهی، شمار لنفوسیتها، تیتر آنتیبادی علیه ویروس بیماری نیوکاسل و نیز شاخص رنگ زرده، استحکام پوسته تخممرغ و واحد هاو را به طور معنی داری (05/0P<) بهبود بخشید. شمار هتروفیلها، میزان کلسترول و تری گلیسرید پلاسما (05/0P<) و فعالیت آنزیمهای گلوتامیک پیروات ترانس آمیناز و آلکالین فسفاتاز در سرم پرندگانی که باجیره حاوی پنج درصد مخلوط پسماند تغذیه شده بودند کاهش یافت (05/0P<). نتیجه گیری نهایی: هرچند تغذیه نسبت پایین اسیدهای چرب امگا-6 به امگا-3 موجب کاهش سطح کلسترول و تری گلیسرید پلاسما، کلسترول تخم مرغ و فعالیت آنزیمهای کبدی گردید، اما امکان بروز فساد اکسیداتیو را افزایش داد. با این وجود بهرهگیری از سطح پنج درصد پسماند گیاهان دارویی توانست موجب بهبود شاخصهای آنزیمی سلامت کبد، پاسخ های ایمنی سلولی و استحکام پوسته تخم مرغ شود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7271_b4d4461b6dc10b64f3cdd02dbad845c5.pdf
2018-02-20
35
55
اسیدهای چرب
پاسخهای ایمنی
پسماند گیاهان دارویی
فراسنجهها خونی
کیفیت تخممرغ
مرغ تخمگذار
سیده اسماء
موسوی
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
سید امیرحسین
مهدوی
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان
LEAD_AUTHOR
احمد
ریاسی
asi@cc.iut.ac.ir
3
گروه علوم دامی،دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
حسین
حسینی
4
گروه علوم دامی،دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
Akila G, Rajakrishjnan V, Viswanathan P, Rajakrishjnan KN and Menon VP, 1998.Effect of curcumin on lipid profile and lipid peroxidation status in experimental hepatic fibrosis. Hepatology Research 11: 147-157.
1
Al-Daraji HA, Al-Hassani AS, Al-Mashadani HA, Al-Hayani WK and Mirza HA, 2010.Effect of dietary supplementation with sources of omega-3 and omega-6 fatty acids on certain blood characteristics of laying quail. International Journalof Poultry Science 9: 689-694.
2
Almeida IMC, Barreira JCM, Oliveira MBPP and Ferreira ICFR, 2011. Dietary antioxidant supplements: benefits of their combined use. Food and Chemical Toxicology 49: 3232–3237.
3
Alparslan G and Zdogan M, 2006.The effect of diets containing fish oil on some blood parameters and the performance values of broilers and cost efficiency. International Journal of Poultry Science 5: 415-419.
4
AOAC. 2006. Official methods of analysis. AOAC International, Arlington, VA.
5
Awaad MHH, Abdel-Alim GA, Sayed Kawkab KSS, Ahmedi A, Nada AA, Metwalli ASZ and Alkhalaf AN, 2010. Immunostimulant effects of essential oils of peppermint and eucalyptus in chickens. Pakistan Veterinary Journal30: 61-66.
6
Babu PS and Srinivasan K, 1997. Hypolipidemic action of curcumin, the active principle of turmeric (Curcuma longa) in streptozotocin induced diabetic rats. Molecular and Cellular Biochemistry 166: 169-175.
7
Badraoui R, Blouin S, Moreau MF, Gallois Y, Rebai T, Sahnoun Z, Basle M and Chappard D, 2009.Effect of alpha tocopherol acetate in Walker 256/B cells-induced oxidative damage in a rat model of breast cancer skeletal metastases. Chemico-Biological Interactions 182: 98-105.
8
Baucells MD, Crespo N, Barroeta AC, Lopes S and Groshorn AM, 2000.Incorporation of different polyunsaturated fatty acids into eggs. Poultry Science 79: 51-59.
9
Boka J, Mahdavi AH, Samie AH and Jahanian R, 2014.Effect of different levels of black cumin (Nigella sativa L.) on performance, intestinal Escherichia coli colonization and jejunal morphology in laying hens. AnimalPhysiologyand Animal Nutrition 98: 373–383.
10
Botsoglou N, Florou-Paneri P, Botsoglou E, Dotas V, Giannenas I, Koidis A and Mitrakos P, 2005.The effect of feeding rosemary, oregano, saffron and alpha-tocopheryl acetate on hen performance and oxidative stability of eggs. S African Journal of Animal Science 35: 143–151.
11
CherianG and Hayat Z, 2009. Long-term effects of feeding flaxseeds on hepatic lipid characteristics and histopatology of laying hens. Poultry Science 88: 2555-2561.
12
Chowdhury SR, Chowdhury SD and Smith TK, 2002.Effects of dietary garlic on cholesterol metabolism in laying hens. Poultry Science 81: 1856-1862.
13
Fernandez A, Verde MT, Gascon M, Ramos JJ, Gomez J, Lucoand DF and Chavez G, 1994. Variation of clinical biochemical parameters of laying hens and broiler chicks fed aflatoxin containing feed. Avian Pathology 23: 37-47.
14
FlorouPaneri P, Nikolakakis L, Giannenas L, Koidis A, Botsoglou E, Dotas V and Mistsopoulos L, 2005. Hen performance and egg quality as affected by dietary oregano essential oil and α– tocopherol acetate supplementation. International Journal of Poultry Science 4: 449-454.
15
Gadoth N, 2008. On fish oil and omega-3 supplementation in children: The role of such supplementation on attention and cognitive dysfunction. Brain and Development 30: 309-312.
16
Galdine C, Morand C, Rock E, Bauchart D and Durand D, 2007. Plant extracts rich in polyphenols (PERP) are efficient antioxidants to prevent lipoperoxidation in plasma lipids from animals fed n-3 PUFA supplemented diets. Animal Feed Science and Technology 136: 281-296.
17
GenedySalwa G and Zeweil HS, 2003. Evaluation of using medicinal plants as feed additives in growing Japanese quail diets. The 68 Scientific Conference of Polish Animal Production Society, 9-12 September 2003, Krakov, Poland.
18
Goli SA, Miskanda MS, Kadivar M and Keramat J, 2009. The production of an experimental table margarine enriched with conjugated linoleic acid (CLA): physical properties. Journal of the American Oil Chemists' Societym 110: 1102-1108.
19
Hayat Z, Cherian G, Pasha TN, Khattak FM and Jabbar MA, 2010. Oxidative stability and lipid components of eggs from flax-fed hens: Effect of dietary antioxidants and storage. Poultry Science 89: 1285-1292.
20
Huopalahti R, López-Fandiño R, Anton M and Schade R, 2007.Bioactive Egg Compounds. Springer-Verlag, Berlin.
21
Jirovetz L, Buchbauer G, Stoilova I, Stoyanova A, Krastanova A and Schmidt E, 2006. Chemical composition and antioxidant properties of the clove leaf essential oil. Journal of Agricultural and Food Chemistry 54: 6303-6307.
22
Jump DB, 2002.The biochemistry of n-3 polyunsaturated fatty acids. Journal of Biological Chemistry 227: 8755-8758.
23
Kehn P and Fernanetes G, 2001.The importance of omega-3 fatty acids in the attenuation of immune-mediated diseases. Journal of Clinical Immunology 21: 99-101.
24
Kehui O, Wenjun W, Mingshen X, Yan J and Xinchen S, 2004. Effects of different oils on the production, performance and polyunsaturated fatty acids and cholesterol level of yolk in hens. Asian-Australas Journal of Animal Science 17: 843-847.
25
Kubow S, 1993. Lipid oxidation products in food and atherogenesis. Nutrition Reviews 51: 33–40.
26
Lavinia S, Gabil D, Drinceanuy D, Stef D, Daniella M, Julean C, Ramona T and Coriconivoschi N, 2009. The effect of medicinal plants and plant extracted oils on broiler duodenum morphology and immujnological Profile-Rom. Biotechnology Letters 14: 4606-4614.
27
Leshchinsky TV and Klasing KC, 2001.Relationship between the level of dietary vitamin E and the immune response of broiler chickens. Poultry Science 80:1590-1599.
28
Lewis N, Seburg S and Flanangan N, 2000.Enriched eggs as a source of omega-3 PUFA for humans. Poultry Science 79: 971-974.
29
Meydani SN, Lichtenstein AH, Cornwall S, Meydani M, Goldin BR, Rasmussen H, Dinarello SA and Schaefer EJ, 1993. Immunologic effects of national cholesterol education panel step-2 diets with and without fish-derived n-3 fatty acid enrichment. Journal ofClinical Investigation 92: 105-113.
30
Morita T, Jinno K, Kawagishi H, Arimoto Y, Suganuma H, Inakuma T and Sugiyama K, 2003.Hepatoprotective effect of myristicin from nutmeg (Myristica fragrans) on lipopolysaccharide/ Dgalactosamine-induced liver injury. Journal of Agricultural and Food Chemistry 51: 1560-1565.
31
Nadia LR, Hassan RA, Qota EM and Fayek HM, 2008. Effect of natural antioxidant on oxidative stability of eggs and productive and reproductive performance of laying bens.International Journal of Poultry Science7: 134-150.
32
Saleh AA, 2013. Effects of fish oil on the production performance, polyunsaturated fatty acids and cholesterol levels of yolk in hens. Emirates Journal of Food and Agriculture25: 605-612.
33
SAS, 2001. Procedures Guide, Version 9, 3td ed. SAS Institute Inc., Cary, NC.
34
Scheideler SE, Froning G and Cuppett S, 1997. Studies of consumer acceptance of high omega-3 fatty acid-enriched eggs. Journal of Applied Poultry Research 6:137–146.
35
Shini S, Kaiser P, Shini A and Bryden WL, 2008.Differential alterations in ultrastructural morphology of chicken heterophils and lymphocytes induced by corticosterone and lipopolysaccharide. Vet Journal of Immunology and Immunopathology 122: 83-93.
36
Siddiqui RA, Harvey KA and Zalog GP, 2008 Modulation of enzymatic activities by n-3 polyunsaturated fatty acids to support cardiovascular health. Journal of Nutritional Biochemistry 19: 417-437.
37
Skottova N, Kazdova L, Oliyarnyk O, Vecera R, Sobolova L and Ulrichova J, 2004. Phenolics-rich extracts from Silybummarianum and Prunella vulgaris reduce a high surcorse diet induce oxidative stress in hereditary hypertriglyceridemic rats. Pharmacology Research 50:123-130.
38
Srinivasan K, 2004. Spices as influencers of body metabolism: an overview of three decades of research. Food Research International 38: 77–86.
39
Stedman NL, Brown TP, Brooks RL and Bounous DI, 2001. Heterophil function and resistance to staphylococcal challenge in broiler chickens naturally infected with avian leukosis virus subgroup. Journal of Veterinary Pathology 38: 519–527.
40
Taheri-Gandomani V, Mahdavi AH, Rahmani HR, Riasi A and Jahanian E, 2014. Effects of different levels of clove bud (Syzygium aromaticum) on performance, intestinal microbial colonization, jejunal morphology, and immunocompetence of laying hens fed different n-6 to n-3 ratios. Livestock Science 167: 236–248.
41
ValleParaso MGR, Vidamo PJS, Anuciadoand RVP and Lapitan AM, 2005. Effects of Aloe vera (Aloebarbadensis) on the white blood cell count and antibody titre of broiler chickens vaccinated agains New castle disease. Philipp Journalof Veterinary Medicine 42:49-52.
42
Washburn KW and Nix DF, 1974. A rapid technique for extraction of yolk cholesterol. Poultry Science 53: 1118-1122.
43
Yalcin S, Yalcin S, Erol H, Bugdayci KE, Ozsoy B and Caki S, 2009. Effects of dietary black cumin seed (Nigella sativa L.) on performance, egg traits, egg cholesterol content and egg yolk fatty acid composition in layinghens. Journal of the science of food and Agriculture 89: 1737–1742.
44
Yaqoob P and Calder PC, 1995. The effects of dietary lipid manipulation on the production of murine T -cell-derived cytokines. Cytokine7: 548- 553.
45
Yung-Shin S, Jau-Tien L, Yuan-Tsung C, China-Jung C and Deng-Jue Y, 1999.Evaluation of antioxidant ability of ethanolic extract from dill (Anethum graveolens L.) flower. Food Chemistry115:515-521.
46
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سطوح مختلف آرژنین در جیرههای بر پایه کنجاله کانولای عملآوری شده و یا بدون عملآوری با مس بر عملکرد، وزن اندامها و برخی از فراسنجههای خونی جوجههای گوشتی
زمینه مطالعاتی: مس و آرژنین دارای وظایف فراوانی میباشند که میتوانند برای جوجههای گوشتی مفید باشند. هدف: این آزمایش به منظور مطالعه اثر عملآوری کنجاله کانولا با سطوح مختلف یون مس و مکمل آرژنین بر عملکرد، وزن اندامهای بدن و برخی متابولیتهای خونی جوجههای گوشتی انجام شد. روش کار: آزمایش به شکل آزمون فاکتوریل 3×3 در قالب طرح کاملاً تصادفی با استفاده از سه سطح مس (صفر، 125 و 250 میلیگرم در کیلوگرم) و سه سطح آرژنین (صفر، 1/0 و 2/0 درصد) با تعداد 405 قطعه جوجهی گوشتی نر (سویه راس 308) در 9 تیمار، 5 تکرار و در هر تکرار 9 جوجه در یک دورهی 3 هفتهای (42-22 روزگی) صورت گرفت. نتایج: افزایش وزن بدن و ضریب تبدیل خوراک با عملآوری کنجاله کانولا با سطح 250 میلیگرم مس به طور معنیداری بهبود یافت (05/0>P). عملآوری کنجاله کانولا با مس (01/0>P) و افزودن سطح 2/0 درصد آرژنین (05/0>P) به جیره به طور معنیداری وزن سینه را افزایش داد. مکملسازی 2/0 درصد آرژنین باعث کاهش چربی حفره شکمی و وزن ششها و بالعکس افزایش وزن دوازدهه (05/0>P) و ژژنوم (01/0>P) گردید. پایینترین وزن سکوم در جوجههای تغذیه شده با جیرههای بر پایه کنجاله کانولا عملآوری شده با سطح 250 میلیگرم در کیلوگرم مس مشاهده شد (05/0>P). غلظت پلاسمایی اسید اوریک در پرندگان تغذیه شده با جیرههای مکمل شده با 2/0درصدآرژنین نسبت به دو سطح دیگر پایینتر بود (01/0>P). نتیجهگیری نهایی: به طور کلی نتایج این آزمایش نشان داد که عملآوری کنجاله کانولا با مس میتواند باعث کاهش اثرات مضر گلوکوزینولاتها بر عملکرد جوجههای گوشتی گردد و همچنین افزودن 2/0 درصد آرژنین میتواند موجب تغییر متابولیسم انرژی به سمت ذخیره پروتئین شود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7272_d1e9cc163a75b6975ec8586e10760b3e.pdf
2018-02-20
57
76
جوجههای گوشتی
عملآوری با مس
عملکرد
مکملسازی آرژنین
صبا
عظیمییوالاری
1
گروه علوم دامی، دانشکدهی کشاورزی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
پرویز
فرهومند
parviz.farhomand@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکدهی کشاورزی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
سینا
پیوستگان
sina.payvastegan@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکدهی کشاورزی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
پیام
باغبان کنعانی
p.baghbankanani@tabrizu.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکدهی کشاورزی، دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
Andrew J, Maxwell MD, Kristen A and Bruinsma MS, 2001. Uric Acid Is Closely Linked to Vascular Nitric Oxide Activity. Journal of the American College of Cardiology 38: 1850-1858.
1
Aydin A, Pekel AY, Issa G, Demirel G and Patterson PH, 2010. Effect of dietary copper, citric acid and microbial phytase on digesta pH and ileal and carcass microbiota of broiler chickens fed a low available phosphorus diet. Journal of Applied Poultry Research 19:422-431.
2
Balch MD, James F, Balch CNC and Phyllis A, 1997. Prescription for nutritional healing 2nd Edn. Avery Publishing group, New York pp: 35-36.
3
Ball RO, Urschel KL and Pencharz PB, 2007. Nutritional consequences of interspecies differences in arginine and lysine metabolism. Journal of Nutrition 137:1626–1641.
4
Barbul A, 1986. Arginine: Biochemistry, physiology, and therapeutic implications. Journal of Parenteral and Enteral Nutrition10:227–238.
5
Bauchart-Thevret C, Cui L, Wu G and Burrin DG, 2010. Arginine-induced stimulation of protein synthesis and survival in IPEC-J2 cells is mediated by mTOR but not nitric oxide. American Journal of Physiology. Endocrinology and Metabolism 299: 899-909.
6
Caspary WF, 1992. Physiology and pathophysiology of intestinal absorption. American Journal of Clinical Nutrition 55: 299-308.
7
Chamruspollert G, Pesti GM and Bakalli RI, 2002. Dietary interrelationships among arginine, methionine, and lysine in young broiler chicks. British Journal of Nutrition 88: 655-660.
8
Choct M, Naylor A, Hutton O and Nolan J, 2000. Increasing efficiency of lean tissue composition in broiler chickens. A Report for the Rural Industries Research and Development Corporation. Publication No 98/123.
9
Clandinin DR and Robblee AR, 1983. Canola meal can be good source of high quality protein for poultry. Feedstuffs 55: 36-37.
10
Clifford A and Smith DV, 1987. Rapid method for determining total glucosinolates in rapeseed by measurement of enzymatically released glucose. Journal of the Science of Food and Agriculture 38: 141–150.
11
Corzo A, Moran ETJ and Hoehler D, 2003. Arginine need of heavy broiler males: applying the ideal protein concept. Poultry Science 82: 402–407.
12
Cote CG, Yu FS, Zulueta JJ, Vosatka RJ and Hassoun PM, 1996. Regulation of intracellular xanthine oxidase by endothelial-derived nitric oxide. American Journal of Physiology 271: 869–874.
13
Cui HX, Zheng MQ, Liu RR, Zhao GP, Chen JL and Wen J, 2012. Liver dominant expression of fatty acid synthase (FAS) gene in two chicken breeds during intramuscular-fat development. Molecular Biology Reports 39:3479–3484.
14
Dann SG and Thomas G, 2006. The amino acid sensitive TOR pathway from yeast to mammals. The Federation of European Biochemical Societies Letters580:2821–2829.
15
Eaton S, 2002. Control of mitochondrial beta-oxidation flux. Progress in Lipid Research 41: 197–239.
16
Fernandes JIM, Murakami AE, Martins E, Sakamoto MI and Garcia ERM, 2009. Effect of arginine on the development of the pectoralis muscle and the diameter and the protein: deoxyribonucleic acid rate of its skeletal myofibers in broilers. Poultry Science 88: 1399-1406.
17
Fouad AM, El-Senousey HK, Yang XJ and Yao JH, 2013. Dietary L-arginine supplementation reduces abdominal fat content by modulating lipid metabolism in broiler chickens. Animal Science 7:1239–1245.
18
Fouad AM and El-Senousey HK, 2012. Nutritional Factors Affecting Abdominal Fat Deposition in Poultry: A Review. Asian Australas. Journal of Animal Scienc 27: 1057-1068.
19
Hara K, Yonezaw K, Weng QP, Kozlowski MT, Belham C and Avruch J, 1998. Amino acid sufficiency and mTOR regulate p70 S6 kinase and eIF-4E BP1 through a common effector mechanism. Journal of Biolology Chemestiry 273:14484–14494.
20
Hawbaker JA, Speer VC, Hays VW and Catron DV, 1961. Effect of copper sulfate and other chemotherapeutics in growing swine rations. Journal of Animal Science 20: 163-167.
21
Houston M, Chumley P, Radi R, Rubbo H and Freeman BA, 1998. Xanthine oxidase reaction with nitric oxide and peroxynitrite. Archive for Biochemistry and Biophysics 355:1–8.
22
Izadinia M, Nobakht M, Khajali F, Faraji M, Zamani F, Qujeq D and Karimi I, 2010. Pulmonary hypertension and ascites as affected by dietary protein source in broiler chickens reared in cool temperature at high altitudes. Animal Feed Science and Technology 155: 194-200.
23
Jobgen W, Meininger CJ, Jobgen SC, Li P, Lee MJ, Smith SB, Spencer TE, Fried SK and Wu G, 2009. Dietary L-arginine supplementation reduces white fat gain and enhances skeletal muscle and brown fat masses in diet-induced obese rats. Journal of Nutrition 139: 230–237.
24
Kermanshahi H and Abbasi Pour AR, 2006. Replacement value of soybean meal with rapseed meal supplemented with or without a dietary NSP-degrading enzyme on performance, carcass traits and thyroid hormones of broiler chickens. International Journal of Poultry Science 5:925-930.
25
Khajali F and Wideman RF, 2010. Dietary arginine: metabolic, environmental, immunological and physiological interrelationships. World's Poultry Science Journal 66: 751-766.
26
Khajali F, Heydary Moghaddam M and Hassanpour H, 2013. An L-Arginine supplement improves broiler hypertensive response and gut function in broiler chickens reared at high altitude. International Journal of Biometeorology 58:1175-1179.
27
Khajali F and Slominski BA, 2012. Factors that affect the nutritive value of canola meal for poultry. Poultry Science 91:2564–2575.
28
Khajali F, Tahmasebi M, Hassanpour H, Akbari MR, Qujeq D and Wideman RF, 2011. Effects of supplementation of canola meal-based diets with arginine on performance, plasma nitric oxide, and carcass characteristics of broiler chickens grown at high altitude. Poultry Science 90: 2287-2294.
29
Kidd MT, Peebles ED, Whitmarsh SK, Yeatman JB and Wideman RF, 2001. Growth and immunity of broiler chicks as affected by dietary arginine. Poultry Science 80: 1535-1542.
30
Kim DH and Sabatini DM, 2004. Raptor and mTOR: Subunits of a nutrient-sensitive complex. Current Topics in Microbiology and Immunology 279:259–270.
31
Kim GB, Seo YM, Shin KS, Rhee AR, Han J and Paik IK, 2011. Effects of supplemental copper-methionine chelate and copper-soy-proteinate on performance, blood parameters, liver mineral content and intestinal microflora of broiler chickens. Journal of Applied Poultry Research 20:21-32.
32
Le Roith D, Bondy C, Yakar S, Liu JL and Butler A, 2001. The somatomedin hypothesis: 2001. Endocrine Reviews22:53–74.
33
Lee C, Liu X and Zweier JL, 2000. Regulation of xanthine oxidase by nitric oxide and peroxynitrite. Journal of Biological Chemistry 275:9369–76.
34
Lu L, Wang RL, Zhang ZJ, Steward FA, Luo X and Liu B, 2010. Effect of dietary supplementation with copper sulphate or tribasic copper chloride on growth performance, liver copper concentrations of broiler in floor pens, and stabilities of vitamin E and phytase in feeds. Biological Trace Elements Research 138:181-189.
35
Marangos A and Hill R, 1974. The hydrolysis and absorption of thioglycosides of rapeseed meal. Proceedings of the Nutrition Society 33:90A (abstract).
36
Mawson R, Heany RK, Piskula M and Kozlowska H, 1993. Rapeseed meal glucosinolates and their antinutritional effects1. Rapeseed production and chemistry of glucosinolates. Die Nahrung 37: 131–140.
37
McNeill L, Bernard K and MacLeod MG, 2004. Food intake, growth rate, food conversion and food choice in broilers fed on diets high in rapeseed meal and pea meal, with observations on sensory evaluation of the resulting poultry meat. British Poultry Science 45:519–523.
38
Murakami AE, Fernandes JIM, Hernandes L and Santos, TC, 2012. Effects of starter diet supplementation with arginine on broiler production performance and on small intestine morphometry. Pesquisa Veterinária Brasileira 32: 259-266.
39
NRC, 1994. Nutrient Requirements for Poultry, ninth rev. ed. National Research Council, NY.
40
Pang Y, Patterson JA and Applegate TJ, 2009. The influence of copper concentration and source on ileal microbiota. Poultry Science 88:586-592.
41
Payvastegan S, Farhoomand P and Delfani N, 2013. Growth Performance, Organ Weights and, Blood Parameters of Broilers Fed Diets Containing Graded Levels of Dietary Canola Meal and Supplemental Copper. Journal of Poultry Science 50: 354-363.
42
Pesti GM, Bakalli RI, 1996. Studies on the feeding of cupric sulfate pentahydrate and cupric citrate to broiler chickens. Poultry Science 75: 1086-1091.
43
Pluske JR, Hampson DJ and Williams IH, 1997. Factors influencing the structure and function of the small intestine in the weaned pig – a review. Livestock Production Science51: 215- 236.
44
Popovic PJ, Zeh HZ and Ochoa JB, 2007. Arginine and immunity. Journal of Nutrition 137:1681–1686.
45
Rhoads JM and Wu GY, 2009. Glutamine, arginine, and leucine signaling in the intestine. Amino Acids 37:111–122.
46
Rowan TG, Lawrence TLJ and Kershaw SJ, 1991. Effects of dietar copper and probiotic on glucosinolate concentrations in ileal digesta and in faeces of growing pigs given diets based on rapeseed meals. Animal Feed Science and Technology 35: 247-258.
47
Rubin LL, Canal CW, Ribeiro ALM, Kessler A, Silva I, Trevizan L, Viola T, Raber M, Gonçalves TA and Krás R, 2007. Effects of Methionine and Arginine Dietary Levels on the Immunity of Broiler Chickens Submitted to Immunological Stimuli. Brazilian Journal of Poultry Science 9: 241-247.
48
Saki AA, Haghighat M and Khajali F, 2013. Supplemental arginine administered in ovo or in the feed reduces the susceptibility of broilers to pulmonary hypertension syndrome. British Poultry Science 54:575-580.
49
Schöne F, Jahreis G and Richter G, 1993. Evaluation of rapeseed meal in broiler chickes: effect of iodine supply and glucosinolate degradation by myrosinage and copper. Journal of the Science of Food and Agriculture 61: 245-252.
50
Schone F, Ludke H, Hennig A and Jahreis G, 1988. Copper and iodine in pig diets with high glucosinolate rapeseed meal. 2. Influence of different iodine supplements to diets with untreated rapeseed meal or rapeseed meal treated with copper ions on performance and thyroid hormone status of growing pigs. Animal Feed Science and Technology 22: 45-59.
51
Schone F, Winnefeld K, Kirchner E, Grun M, Ludke H and Hennig A, 1990. Copper and iodine in pig diets with high glucosinolate rapeseed meal. 3. Treatment of rapeseed meal with copper, and the effect of iodine supplementation on trace element statusand some related blood (serum) parameters. Animal Feed Science and Technology 30: 143-154.
52
Scott GS and Bolton C, 2000. L-Arginine modifies free radical production and the development of experimental allergic encephalomyelitis. Inflammation Research 49:720–726.
53
Sharifi MR, Khajali F, Hassanpour H, Pour-Reza J and Pirany N, 2015. Supplemental L-arginine Modulates Developmental Pulmonary Hypertension in Broiler Chickens Fed Reduced-Protein Diets and Reared at High Altitude. Poultry Science Journal 3: 47-58.
54
Sklan D and Noy Y, 2004. Catabolism and deposition of amino acids in growing chicks: Effect of dietary supply. Poultry Science 83:952–961.
55
Tan X, Hu SH and Wang XL, 2007. Possible role of nitric oxide in the pathogenesis of pulmonary hypertension in broilers: a synopsis. Avian Pathology 36: 261-267.
56
Tesseraud S, Maaa N, Peresson R and Chagneau AM, 1996. Relative responses of protein turnover in three different skeletal muscles to dietary lysine deficiency in chicks. British Poultry Science 37:641–650.
57
Tripathi MK and Mishra AS, 2007. Glucosinolates in animal nutrition: A review. Animal Feed Science and Technology 132: 1-27.
58
Tripathi MK, Mishra AS, Misra AK, Mondal D and Karim SA, 2001. Effect of groundnut with high glucosinolate mustard (Brassica juncea) meal on nutrient utilization, growth, vital organ weight and blood composition in lambs. Small Ruminant Research 39: 261-267.
59
Tykarski A, 1991. Evaluation of renal handling of uric acid in essential hypertension: hyperuricemia related to decreased urate secretion. Nephron 59:364–8.
60
Wu LY, Fang YJ and Guo XY, 2011. Dietary L-arginine supplementation beneficially regulates body fat deposition of meat-type ducks. British Poultry Science 52: 221–226.
61
Wu X, Ruan Z, Gao Y, Yin Y, Zhou X, Wang L, Geng M, Hou Y and Wu G, 2010. Dietary supplementation with L-arginine or N-carbamyl glutamate enhances intestinal growth and heat shock protein-70 expression in weanling pigs fed a corn- and soybean meal-based diet. Amino Acids 39: 831-839.
62
Xia MS, Hu HC and Xu RZ, 2004. Effects of copper bearing montmorillonite on growth performance, digestive enzyme activities and intestinal microflora and morphology of male broiler. Poultry Science 83: 1868-1875.
63
Yao K, Guan S, Li T, Huang R, Wu G, Ruan Z and Yin Y, 2011. Dietary L-arginine supplementation enhances intestinal development and expression of vascular endothelial growth factor in weanling piglets. British Journal of Nutrition 105: 703-709.
64
Yuan C, Ding Y, Qiang He, Azzam MMM, Lu JJ and Zou X T, 2015. L-arginine upregulates the gene expression of target of rapamycin signaling pathway and stimulates protein synthesis in chicken intestinal epithelial cells. Poultry Science 94:1043–1051.
65
Zeb A, 1998. Possibilities and limitations of feeding rapeseed meal to broiler chicks. Ph.D. degree thesis. Georg-August University Goettingen 125pp.
66
Zhou W, Kornegay ET, Lindemann MD, Swinkels JWGM, Welton MK and Wong E A, 1994. Stimulation of growth by intravenous injection of copper in weanling pigs. Journal of Animal Science 72: 2395–2403.
67
ORIGINAL_ARTICLE
اثر بذر خار مریم خام و حرارتدیده بر عملکرد رشد و برخی از فراسنجههای خونی و ایمنی هومورال جوجههای گوشتی
زمینه مطالعاتی: گیاهان دارویی به دلیل اثرات مفید بر عملکرد طیور، به عنوان افزودنیهای طبیعی بیشتر مورد توجه قرار گرفتهاند. هدف: تحقیق حاضر به منظور بررسی اثر سطوح مختلف بذر خار مریم (Silybum marianum L.) خام و حرارتدیده بر صفات تولیدی، برخی از فراسنجههای خونی و سیستم ایمنی جوجههای گوشتی انجام شد. روش کار: تعداد 256 قطعه جوجه گوشتی یک روزه سویه تجاری راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی به 4 تیمار با 4 تکرار و 16 قطعه پرنده در هر تکرار اختصاص یافتند. تیمارهای آزمایشی شامل مقادیر صفر درصد (شاهد)، 4/0 درصد بذر خام، 4/0 درصد بذر حرارتدیده و 8/0 درصد بذر حرارتدیده خار مریم طی یک دوره 42 روزه به پرندگان تغذیه شدند. نتایج: طی دوره آغازین (10-0 روزگی)، افزودن 4/0 درصد بذر خارمریم حرارتدیده موجب کاهش وزن و افزایش ضریب تبدیل خوراک جوجهها شد (01/0P<). اما در کل دوره آزمایش (42-0 روزگی) هیچ یک از صفات عملکرد رشد جوجهها تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفتند. افزودن 4/0 درصد خارمریم حرارت دیده موجب افزایش معنیدار غلظت آلبومین (05/0P<) و پروتئین کل (01/0>P) سرم شد. فعالیت آلانین آمینوترانسفراز در اثر سطوح بذر خار مریم حرارتدیده و آسپارتات آمینوترانسفراز در اثر سطوح 4/0 درصد بذر خام و 8/0 درصد بذر حرارتدیده کاهش یافت (01/0P<). استفاده از تمام سطوح بذر خار مریم، تیتر آنتیبادی علیه SRBC (01/0P<) و تیتر IgG (05/0P<) را افزایش داد ولی بر تیتر IgM تأثیری نداشت. نتیجهگیری کلی: نتایج نشان داد که استفاده از بذر خار مریم در جیره جوجههای گوشتی تأثیر مثبتی بر عملکرد ندارد ولی موجب بهبود عملکرد کبد و تقویت سیستم ایمنی هومورال شد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7273_b9979127e1c05973a594eec4a293039b.pdf
2018-02-20
77
90
آنزیمهای کبدی
SRBC
ماریتیغال
آلبومین سرم
جوجه گوشتی
منصوره
مظفرپورتوبکانلو
1
گروه علوم دامی دانشگاه محقق اردبیلی
AUTHOR
میرداریوش
شکوری
mdshakuri@uma.ac.ir
2
گروه علوم دامی دانشگاه محقق اردبیلی
LEAD_AUTHOR
حسین
جانمحمدی
hjanmohamadi@yahoo.com
3
گروه علوم دامی دانشگاه تبریز
AUTHOR
Abenavoli L, Capasso R, Milic N and Capasso F, 2010. Milk thistle in liver diseases: past, Present, future. Phytotherapy Research24: 1423–1432.
1
Chand N, Muhammad D, Durrani FR, Subhan Qureshi M and Ullah SS, 2011. Protective effects of milk thistle (Silybum marianum) against aflatoxin B1 in broiler chicks. Asian-Australian Journal of Animal Science 24: 1011–1018.
2
Cheema MA, Qureshi MA and Havenstein GB, 2003. A comparison of the immune response of 2001 commercial broiler with a 1957 random bred broiler strain when fed representative1957 and 2001 broiler diets. Poultry Science 82: 1519-1529.
3
Das SK and Vasudevan DM, 2006. Protective effects of silymarin, a milk thistle (Silybum marianum) derivative on ethanol-induced oxidative stress in liver. Indian Journal of Biochemistry and Biophysics 43: 306–311.
4
Ding TM, Tian SJ, Zhang ZX, Gu DZ, Chen YF, Shi YH and Sun ZP, 2001. Determination of active component in silymarin by RP-LC and LC/MS. Journal of Pharmaceutical and Biochemical Analysis 26: 155-161.
5
Fallah Hosseini H, Hemmati Moghaddam AR and Alijani SM, 2004. A review on medicinal plant, milk thistle. Journal of Medicinal Plants 11: 14-24 (In Persian).
6
Fani Makki O, Ebrahimzadeh A, Ansaari Nik H and Ghazghi M, 2013. Effect of milk thistle (Silybum marianum L.) and thyme (Thymus vulgaris L.) herbs on immunity and some blood metabolites in broiler chicks. Veterinary Clinical Pathology 26: 1836-1843 (In Persian).
7
Fani Makki O, Omidi A, Afzali N, Sarir H, Frouzanmehr M and Shibak A, 2014. Efficacy of Silybum marianum seeds in ameliorating the toxic effects of aflatoxin B1 in broilers. Iranian Journal of Toxicology 24: 977-982.
8
Hassanloo T, Khavarinejad R and Majidi A, 2001. The study on morphological characteristics and storage of different flavonolignans in harvested and endemic milk thistle of Iran. Journal of Medicinal Plants 22: 77-90 (In Persian).
9
Jamshidi AH, Ahmadi Ashtiani HR, Ghamhosseini B and Bokaei S, 2007. The effect of oral administration of milk thistle extract (silymarin) on tissue and biochemical changes caused by aflatoxin in broiler chickens. Journal of Medicinal Plants 24: 92-100 (In Persian).
10
Johnson VJ, He Q, Osuchowski MF and Sharma RP, 2003. Physiological responses of a natural antioxidant flavonoid mixture, silymarin, in BALB/c mice: III. Silymarin inhibits T-lymphocyte function at low doses but stimulates inflammatory processes at high doses. Planta Medica 69: 44–49.
11
Khatami SA, 2015. The effect of milk thistle (Silybum marianum L.) fruit on growth performance, nutrients digestibility, some blood parameters, intestinal morphology and meat quality of broiler chickens. MSc thesis, University of Mohaghegh Ardabili (In Persian).
12
Krishan G and Narang A, 2014. Use of essential oils in poultry nutrition: A new approach. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research 1: 156-162.
13
Lin HM, Tseng HC, Wang CJ, Lin JJ, Lo CW and Chou FP, 2008. Hepatoprotective effects of Solanum nigrum Linn extract against CCl4-iduced oxidative damage in rats. Chemico-Biological Interactions 171: 283-293.
14
Luper S, 1998. A review of plants used in the treatment of liver disease: Part I. Alternative Medicine Review 3: 410–421.
15
Lutsenko SV, Kashnikova TV, Khmyrov AV, Druz EA, Ledeshkova ON, Fel’dman NB, Luzhnov ND and Lutsenko EV, 2008. Study of the effect of a liposomal form of silymarin on biochemical indices of the blood serum and productivity of broiler chicks. Russian Agricultural Science 34: 415-417.
16
Mojahedtalab AR, Mohammadi M, Roostaei-Ali Mehr M and Asadi M, 2013. Effect of silymarin on performance and immune responses of broilers. Animal Production Research 2:49-58 (In Persian).
17
National Research Council, 1994. Nutrient Requirements for Poultry. National Academy Press, Washington DC.
18
Pradhan SC and Girish C, 2006. Hepatoprotective herbal drug, silymarin from experimental pharmacology to clinical medicine. Indian Journal of Medical Research 124: 491–504.
19
Rashidi N, Bujarpoor M, Chaji M and Aghaei A, 2015. Effect of Silybum marianum seed on performance, carcass characteristics and blood parameters of broiler chickens. Animal Production Research 3: 11-21 (In Persian).
20
Saller R, Melzer J, Reichling J, Brignoli R and Meier R, 2007. An updated systematic review of the pharmacology of silymarin. Forschende Komplementärmedizin 14: 70–80.
21
SAS Institute, 2002. SAS/STAT User’s guide: Statistics, Version 9.1, 4th ed, SAS Inst, Inc, Cary, NC.
22
Schiavone F, Righi A, Quarantelli A, Bruni R, Serventi P and Fusari A, 2007. Use of Silybum marianum fruit extract in broiler chicken nutrition: influence on performance and meat quality. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition 91: 256-262.
23
Shalaei M and Hosseini SM, 2015. Effect of adding different levels of milk thistle and purslane seed to the diet on performance, egg quality traits and composition of serum and egg yolk lipids in laying hens. Journal of Aniamal Science Researches 25: 163-178 (In Persian).
24
Sonkusale P, Bhandarker AG, Kurkare NV, Ravikanth K, Maini S and Sood D, 2011. Hepatoprotective activity of superliv liquid and repchol in CCl4 induced FLKS syndrome in broilers. International Journal of Poultry Science 10: 49-55.
25
Suchý Jr P, Straková E, Kummer V, Herzig I, Písaříková V, Blechová R and Mašková J, 2008. Hepatoprotective effects of milk thistle (Silybum marianum) seed cakes during the chicken broiler fattening. Acta Veterinaria Brno 77: 31-38.
26
Tedesco D, Steidler S, Galletti, S, Tameni M, Sonzogni O and Ravarotto L, 2004. Efficacy of silymarin-phospholipid complex in reducing the toxicity of aflatoxin B1 in broiler chicks. Poultry Science 83: 1839–1843.
27
Zargari A, 1996. Medicinal plants (5 printing). Vol 3. Tehran University publishing, Tehran, Iran. pp 34-38 (In Persian).
28
ORIGINAL_ARTICLE
آنالیز ژنتیکی برخی بیماریهای گاو هلشتاین در گلههای صنعتی استان آذربایجانشرقی
زمینه مطالعاتی: در برخی مطالعات گزارش شده که تولید شیر بالا، اثر منفی بر روی سلامت و طول عمر حیوانات داشته و سوددهی گله را تحت تأثیر قرار میدهد. هدف: اهداف این تحقیق، تهیه گزارشی از دلایل حذف در گلههای گاو شیری، تخمین فراسنجهای ژنتیکی صفات تولیدی، بیماریها و محاسبه همبستگی میان ارزش اصلاحی دامهای نر برای صفات تولیدی و ارزش اصلاحی آنها برای مقاومت در برابر خطر حذف بود. روش کار: در این تحقیق از 31550 رکورد زایش مربوط به 17476 گاو هلشتاین استفاده شد. اطّلاعات تولیدی و بیماریهای منجر به حذف در 47 گله صنعتی استان آذربایجانشرقی در طول سالهای 1374 الی1391 و همچنین اطّلاعات شجرهای حیوانات توسط نرمافزار ASReml مورد آنالیز قرار گرفت. بیماریهای منجر به حذف شامل ورمپستان، جابجایی شیردان، لنگش، کیست تخمدان و متریت مورد بررسی قرار گرفتند. تخمین وراثتپذیری صفات بیماری با استفاده از مدل حیوانی تک متغیره انجام گرفت. نتایج: حذف به دلیل بیماریهای لنگش و متریت به ترتیب با مقادیر010/0±28/0 و 045/0±21/0 بالاترین وراثتپذیری را دارند. بالاترین و پایینترین مقدار تکرارپذیری به ترتیب مربوط به مقدار شیر305 روزه (009/0±47/0) و درصد چربی (009/0±25/0) میباشد. بررسی نتایج همبستگی اسپیرمن میان ارزش اصلاحی دامهای نر برای صفت تولید شیر و ارزش اصلاحی آنها برای بیماریهای جابجایی شیردان، لنگش و متریت همبستگی مثبت نشان داد که به ترتیب (197/0)، (121/0) و (116/0) میباشد. نتیجه گیری نهایی: اکثر صفات بیماری مورد مطالعه همبستگی ژنتیکی مثبت با تولید شیر 305 روزه دارند که نشان میدهد گاوهای با ظرفیت بالا برای تولید شیر احتمال دارد به طور ژنتیکی دارای مقاومت کمتری در برابر خطر حذف شدن به دلیل بیماری باشند.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7274_5e5888085af8f35b6bc60327ee745a45.pdf
2018-02-20
91
103
ارزش اصلاحی
حذف
صفات منجر به حذف
وراثتپذیری
صفات تولیدی
مریم
خالقی دهخوارقانی
maryam42.kh69@yahoo.com
1
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز
AUTHOR
سید عباس
رأفت
rafata@tabrizu.ac.ir
2
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات روشهای مختلف فرآوری دانه کتان بر عملکرد، الگوی اسیدهای چرب شیر و قابلیت هضم ظاهری مواد مغذی در گاوهای شیرده
زمینه مطالعاتی: بهبود الگوی اسیدهای چرب شیر در سالهای اخیر مورد توجه بسیاری از محقیقین قرار گرفته است. هدف: جهت بررسی تاثیر روشهای مختلف فرآوری دانه کتان بر تولید و ترکیب شیر و الگوی اسیدهای چرب شیر، دوازده راس گاو شیرده هلشتاین با چهار جیرهی آزمایشی شامل 1) جیره بدون دانه کتان ( شاهد)، 2) دانه کتان فرآوری نشده، 3) دانه کتان تفت شده و غلطک شده و 4) دانه کتان اکسترود شده تغذیه شدند. روش کار: دانه کتان در دمای 140 الی 145 درجه سانتیگراد اکسترود و تفت داده شد. سپس دانههای تفت شده غلطک زده شدند. نتایج: جیرههای آزمایشی تاثیر معنی داری بر میزان تولید شیر و ماده خشک مصرفی نداشتند. درصد چربی شیر در گاوهای تغذیه شده با جیرههای حاوی دانه کتان اکسترود شده کاهش یافت (05/0>P). غلظت اسید لینولئیک مزدوج (cis-9, trans-11) و اسید لینولئیک شیر در گاوهای تغذیه شده با دانه کتان بالاتر از گاوهای تغذیه شده با جیره شاهد بود (05/0>P). بیشترین غلظت اسید لینولنیک شیر در گاوهای تغذیه شده با جیرههای حاوی دانه کتان فرآوری نشده و دانه تفت شده و غلطک شده مشاهده شد (05/0>P). قابلیت هضم الیاف نامحلول در شوینده خنثی و الیاف نامحلول در شوینده اسیدی در گاوهای تغذیه شده با جیره شاهد بیشترین بود (05/0>P). نتیجه گیری نهایی: نتایج حاصل از تحقیق حاضر نشان داد که دانه کتان تفت و غلطک شده میتواند به عنوان روشی کاربردی جهت بهبود الگوی اسیدهای چرب شیر، افزایش اسید لینولئیک مزدوج (cis-9, trans-11) و اسید لینولنیک، بدون هیچگونه تاثیر منفی بر عملکرد گاوهای شیری مورد استفاده قرار گیرد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7275_1edb79b9c69cb97aea1d2af9f18e0dbc.pdf
2018-02-20
105
119
دانه کتان
روشهای فرآوری
عملکرد و الگوی اسیدهای چرب شیر
سامان
لشکری
s.lashkari@hotmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان
AUTHOR
عثمان
عزیزی
o.azizi@uok.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان
LEAD_AUTHOR
حسین
جهانی عزیزآبادی
ho.jahani@uok.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سمزدایی و امنیت غذایی تفاله سیب بر میزان سم ایمیداکلوپراید، تولید و ترکیبات شیر و قابلیت هضم درون تنی مواد مغذی در بزهای شیرده مهابادی
زمینه مطالعاتی: میزان بقایای سموم و آفتکشها در برخی خوراکهای دام و طیور در ایران به نظر بیشتر از حد مجاز است. هدف: این پژوهش بهمنظور بررسی اثر فرآوریهای مختلف تفاله سیب بر میزان سم ایمیداکلوپراید باقیمانده در تفاله سیب، تولید و ترکیب شیر و قابلیت هضم درون تنی مواد مغذی بزهای شیرده مهابادی مصرفکننده جیرههای حاوی مقادیر بالای تفاله سیب(68/28 درصد در ماده خشک) انجام گرفت. روش کار: در این مطالعه از 30 رأس بز شیرده نژاد مهابادی بالغ تازهزا با میانگین وزن زنده 5 ± 55 کیلوگرم با 5 تیمار آزمایشی و 6 تکرار در قالب طرح کاملاً تصادفی استفاده شد. تیمارهای آزمایشی شامل جیره غذایی حاوی تفاله سیب بدون فرآوری (گروه شاهد)، تفاله سیب پرتو تابی شده با ماکروویو، تفاله سیب فرآوری شده با دو ترکیب تجاری جاذب و غیرفعال کننده سموم ( به ترتیب به میزان 50 g/d به ازای هر رأس و یک kg/t تفاله سیب) و تفاله سیب فرآوری شده با یک ترکیب تجاری اسیدیکننده بودند. نتایج: نتایج نشان داد که بیشترین میزان سم ایمیداکلوپراید موجود در تیمارهای مختلف مربوط به گروه شاهد (86/4 ppm) بود. فرآوری بهمنظور کاهش اثر سموم قارچی سبب افزایش معنیدار تولید شیر نسبت به گروه شاهد شد(Kg/d47/1). .نتایج این تحقیق نشان داد که افزودن ترکیبات جاذب سموم تأثیری روی ترکیبات مختلف شیر نداشت اما میزان ضرایب گوارشپذیری ماده خشک، ماده آلی و پروتئین خام در تیمارهای 2 و3 بهطور معنیداری (05/0P<) افزایش بافت. نتیجهگیری: بهطورکلی ترکیبات جاذب و غیرفعال کننده سموم در جیرههای دارای سطوح بالای تفاله سیب مقادیر سم ایمیداکلوپراید را کاهش داده و علاوه بر تضمین سلامتی و افزایش کارایی تولید شیر، سبب تولید محصول سالمتری میگردد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7276_9dd50277d64c51dd223be418678f9212.pdf
2018-02-20
121
136
اسیدیکننده
پرتو تابی ریزموج
تفاله سیب
جاذب سموم
سمزدایی
احد
گل قاسم قرهباغ
1
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
رسول
پیرمحمدی
afagh@afagh.ac.ir
2
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
LEAD_AUTHOR
یونس علی
علیجو
alijoo@gmail.com
3
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
حامد
خلیل وندی بهروز یار
4
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
واکنش متابولیسمی گاوهای شیری به تزریق زایلازین هنگام دستکاری متابولیتهای خونی
زمینه مطالعاتی: زایلازین بهعنوان داروی بیهوشی و مسکن در جراحی بهطور وسیعی در انسان و دام مورد استفاده قرار میگیرد. هدف: مطالعه حاضر بهمنظور بررسی تأثیر تزریق زایلازین بر متابولیسم گاو شیری هنگام تغییر برخی از متابولیتهای خونی بود. روش کار: در این مطالعه از تعداد 24 رأس گاو هلشتاین با شکم زایش 1/0 ± 5/3 و 3/0 ± 28 (Mean ± SD) هفته شیردهی استفاده شد. تیمارها شامل تزریق انسولین (6 n= ؛ HypoG)، انسولین و گلوکز (5 n= ؛ EuG)، بتاهیدروکسیبوتیرات (5n= ؛ HyperB) و محلول نمکی 9/0% (8 n= ؛ Control) بوده که به مدت 56 ساعت انجام پذیرفت. در ساعت چهل و هفتم آزمایش، زایلازین (16 میکروگرم بر کیلوگرم وزن بدن) تزریق گردید. نمونه خونی قبل از تزریق (ساعت صفر) و یک ساعت بعد از تزریق زایلازین گرفتهشد. تفاوت تغییر متابولیتها با استفاده از رویه GLM و تفاوت بین غلظت متابولیتها و هورمونها قبل و بعد از تزریق زایلازین در داخل هر یک از گروهها و بین تیمارهای مختلف با استفاده از رویه Mixed نرمافزار آماری SAS ارزیابی آماری گردید. دادهها بهصورت Mean ± SEM بیان گردید. نتایج: زایلازین سبب افزایش غلظت گلوکز خون در گروه کنترل وHyperB گردید. در همه گروهها به استثنای HypoG غلظت اسیدهای چرب کاهش یافت. غلظت بتاهیدروکسیبوتیرات و هورمونهای انسولین و گلوکاگون تغییری نکرد ولی در گروه HypoG افزایش غلظت انسولین مشاهده شد. کاهش غلظت هورمون کورتیزول در همه گروه ها به استثنای HypoG مشاهده شد. نتیجهگیری نهایی: تأثیر زایلازین در زمان تغییر متابولیتها متفاوت میباشد. عدم تغییر غلظت گلوکز در گروههایی که انسولین دریافت کرده بودند ناشی از اثر ممانعت کنندگی انسولین بر افزایش غلظت گلوکز بود. با توجه به افزایش غلظت گلوکز در دو گروه از دامها بدون تغییر در هورمونهای انسولین و گلوکاگون، استنباط میشود که علاوه بر تنظیمات هورمونی مکانیسمهای دیگری نیز در تنظیم گلوکز دخالت دارند.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7277_f5ff918867eb2680a551ef82d073f967.pdf
2018-02-20
137
148
انسولین
زایلازین
گلوکز
متابولیسم
موسی
زرین
mzarin@yu.ac.ir
1
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه یاسوج
LEAD_AUTHOR
روپرت
بروکمایر
rupert.bruckmaier@vetsuisse.unibe.ch
2
گروه فیزیولوژی دامپزشکی دانشگاه برن سوئیس
AUTHOR
Ambrisko TD and Hikasa Y, 2002. Neurohormonal and metabolic effects of medetomidine compared with xylazine in beagle dogs. The Canadian Journal of Veterinary Research 66: 42.49.
1
Bell AWو 1995. Regulation of organic nutrient metabolism during transition from late pregnancy to early lactation. Journal of Animal Science 73: 2804–19.
2
Benson GJ, Thurmon JC, Neff -Davis C, Corbin JE, Davis LE, Wilkinson B and Tranquilli WJ, 1984. Effect of xylazine hydrochloride upon plasma glucose and serum insulin concentrations in adult pointer dogs. Journal of the American Animal Hospital Association 20: 791–794.
3
Benson GJ, Wheaton LG, Thurmon JC, Tranquilli WJ, Olson WA and Davis CA, 1991. Postoperative catecholamine response to onychectomy in isoflurane-anesthetized cats: Effect of analgesics. Veterinary Surgery 20: 222–225.
4
Brockman RP, 1981. Effect of xylazine on plasma glucose, glucagon and insulin concentrations in sheep. Research in Veterinary Science 30: 383–384.
5
Danfaer A, 1994. Nutrient metabolism and utilization in the liver. Livestock Production Science 34: 115–27.
6
Fayed AH, Abdalla EB, Anderson RR, Spencer K and Johnson HD, 1989. Effect of xylazine in heifers under thermoneutral or heat stress conditions. American journal of veterinary research 50 (1): 151-153.
7
Feldberg W, and Symonds HW, 1980. Hyperglycemic effect of xylazine. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics 3: 197–202.
8
Frank LA, Kunkle GA and Beale KM, 1992. Comparison of serum cortisol concentration before and after intradermal testing in sedated and nonsedated dogs. Journal of the American Veterinary Medical Association 200: 507–510.
9
Gotoh M, Iguchi A and Sakamoto N, 1988. Central versus peripheral effect of clonidine on hepatic venous plasma glucose concentrations in fasted rats. Diabetes 37: 44–49.
10
Gross J, van Dorland HA, Bruckmaier RM and Schwarz FJ, 2011. Performance and metabolic profile of dairy cows during a lactational and deliberately induced negative energy balance with subsequent realimentation. Journal of Dairy Science 94: 1820-1830.
11
Hanigan MD, Crompton LA, Metcalf JA and France J, 2001. Modelling mammary metabolism in the dairy cow to predict milk constituent yield, with emphasis on amino acid metabolism and milk protein production: model construction. Journal of Theoretical Biology 213: 223–39.
12
Hsu WH and Hummel SK, 1981. Xylazine-induced hyperglycemia in cattle: A possible involvement of 2-adrenergic receptors regulating insulin release. Endocrinology 109: 825–829.
13
Hucklebridge FH, Clow A, Abeyguneratne T, Huezo-Diaz P and Evans P, 1999. The awakening cortisol response and blood glucose levels. Life Sciences 64: 931–937.
14
Kreipe L, Vernay MCMB, Oppliger A, Wellnitz O, Bruckmaier RM, and van Dorland HA, 2011. Induced hypoglycemia for 48 hours indicates differential glucose and insulin effects on liver metabolism in dairy cows. Journal of Dairy Science 94: 5435-5448.
15
Okwudili UC, Chinedu EA, and Anayo OJ, 2014. Biochemical effects of Xylazine, propofol, and ketamine in West African dwarf goats. Journal of Veterinary Medicine. http://dx.doi.org/10.1155/2014/758581
16
Rizk A, Herdtweck S, Meyer H, Offinger J, Zaghloul A and Rehage J, 2012. Effects of xylazine hydrochloride on hormonal, metabolic, and cardiorespiratory stress responses to lateral recumbency and claw trimming in dairy cows. Journal of the American Veterinary Medical Association 240 (10): 1223-1230.
17
Saha JK, Xia J, Grondin JM, Engle SK and Jakubowski JA, 2005. Acute hyperglycemia induced by ketamine/xylazine anesthesia in rats: Mechanisms and implications for preclinical models. Experimental Biology and Medicine 230: 777-784.
18
Sanhouri AA, Jones RS and Dobson H, 1992. Effects of xylazine on the stress response to transport in male goats. British Veterinary Journal 148 (2): 119-128.
19
Schmidt A, Hödl S, Möstl E, Aurich J, Müller J and Aurich C, 2010. Cortisol release, heart rate, and heart rate variability in transport-naive horses during repeated road transport. Domestic Animal Endocrinology 39(3): 205–213.
20
Sharif SI and Abouazra HA, 2009. Effect of intravenous ketamine administration on blood glucose levels in conscious rabbits. American Journal of Pharmacology and Toxicology 4(2): 38-45.
21
van Dorland HA, Richter S, Morel I, Doherr MG, Castro N and Bruckmaier RM, 2009. Variation in hepatic regulation of metabolism during the dry period and in early lactation in dairy cows. Journal of Dairy Science 92: 1924-1940.
22
Vernay MCMB, Wellnitz O, Kreipe L, van Dorland HA and Bruckmaier RM, 2012. Local and systemic response to intramammary lipopolysaccharide challenge during long-term manipulated plasma glucose and insulin concentrations in dairy cows. Journal of Dairy Science 95: 2540–2549.
23
Vicari T, van den Borne JJGC, Gerrits WJJ, Zbinden Y and Blum JW, 2008. Postprandial blood hormone and metabolite concentrations influenced by feeding frequency and feeding level in veal calves. Domestic Animal Endocrinology 34: 74–88.
24
Vikman HL, Savola JM, Raasmaja A and Ohisalo JJ, 1996. Alpha 2A-adrenergic regulation of cyclic AMP accumulation and lipolysis in human omental and subcutaneous adipocytes. International journal of obesity and related metabolic disorders: journal of the International Association for the Study of Obesity, 20: 185–189.
25
Yamazaki S, Katada T and Ui M, 1982. Alpha2-adrenergic inhibition of insulin secretion via interference with cyclic AMP generation in rat pancreatic islets. Molecular pharmacology 21: 648–653.
26
Zarrin M, De Matteis L, Vernay MCMB and Bruckmaier RM, 2013. Long-term elevation of beta-hydroxybutyrate in dairy cows through infusion: effects on feed intake, milk production, and metabolism. Journal of Dairy Science 96: 2960-2972.
27
Zarrin M, Grossen-Rösti L, Bruckmaier RM, and Gross JJ, 2017. Elevation of blood β-hydroxybutyrate concentration affects glucose metabolism in dairy cows before and after Parturition. Journal of Dairy Science 100: 2323-2333.
28
Zarrin M, Wellnitz O, van Dorland HA, Gross JJ and Bruckmaier RM, 2014. Hyperketonemia during LPS induced mastitis affects systemic and local intramammary metabolism in dairy cows. Journal of Dairy Science 97: 3531–3541.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر نانوذره سلنیم، سلنیم معدنی و آلفاتوکوفرول در فعالیت آنزیم گلوتاتیون پراکسیداز، مقدار سلنیم خون و افزایش وزن برههای نر ماکویی شیرخوار
زمینه مقدماتی: سلنیم و آلفاتوکوفرول از آنتیاکسیدانهای ضروری در سلامتی، رشد و تولید هستند. هدف: تاثیر مکملهای سلنیم و آلفاتوکوفرول در فعالیت گلوتاتیون پراکسیداز (GPX)، غلظت سلنیم خون و ارتباط آنها با افزایش وزن. روش کار: تعداد 32 بره نر ماکوئی شیرخوار در 8 گروه 4 راسی شامل شاهد، نانوذره سلنیم خوراکی (ONanoSe)، آلفاتوکوفرولONanoSe/، سلنیت سدیم خوراکی(ONaSe)، ONaSe/آلفاتوکوفرول،NaSe تزریقی/ آلفاتوکوفرول تزریقی، سلنیت سدیم تزریقی (INaSe) و آلفاتوکوفرول تزریقی انتخاب شدند. برهها در روزهای 1، 4، 7، 30، 60 و 90 توزین و خونگیری شدند. نتایج: میانگین GPX از 8/53 به gr/Hb6/174و سلنیم خون از 190 به nmol/l1/281رسید. بالاترین میزان GPX و سلنیم بهترتیب در ONanoSe و ONanoSe/ آلفاتوکوفرول در آزمایش 90 و پائینترین برای هر دو شاخص در آلفاتوکوفرول در روز 4 بود. میانگین GPX و سلنیم در برههای با مکملهای سلنیم بیشتر از شاهد و آلفاتوکوفرول بوده و سیر صعودی داشتند. تفاوت شاخصها در دفعات نمونهگیری و بین گروهها بجز گروه کنترل معنیدار بود (01/0P<). درصد افزایش وزن در ONanoSe بیشترین و آلفاتوکوفرول کمترین بود. تغییرات افزایش وزن روزانه از 176 تا 218 گرم برای ONanoSe و NaSe/ آلفاتوکوفرول بود. تفاوت وزن در بین گروهها معنیدار نبود ولی زمان نمونهگیری معنیدار بود. افزایش وزن با GPX و سلنیم بجز درآلفاتوکوفرول ONaSe/رابطه معنیداری نداشت. بین GPX/Se در INaSe، ONaSe، ONanoSe و INaSe/ آلفاتوکوفرولدر ماههای 2 و 3 رابطهی معنیداریبود. نتیجهگیری نهایی: مکملهای سلنیم خصوصاً ONanoSe فعالیت GPX و سلنیم را بیشتر از آلفاتوکوفرول افزایش دادند. اگرچه افزایش وزن در ONaSe بیشتر بود اما ارتباطی با مکملهای سلنیم نداشت. رابطه GPX/سلنیممثبت و معنیدار بود. نهایتاً عملکرد ONanoSe نسبت به ONaSe در شاخصهای GPX، سلنیم و افزایش وزن بطور غیر معنیداری بیشتر بود، خصوصاً در افزایش GPX بهتر از نوع معدنی و آلفاتوکوفرول بود لذا پیشنهاد میشود بهعنوان جایگزین مناسب در درمان کمبود سلنیم بهکار رود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7278_4e2f639efe38e3e4bbfdfdd26e41115f.pdf
2018-02-20
149
163
نانوذره سلنیم
آلفا توکوفرول
بره
گلوتاتیون پراکسیداز
افزایش وزن
وحید
شایقی
v.shayeghi91@gmail.com
1
دانشکده دامپزشکی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
علیقلی
رامین
2
دانشکده دامپزشکی دانشگاه ارومیه
LEAD_AUTHOR
سیامک
عصری رضائی
3
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
علی
حسن زاده
a.hassanzadeh@urmia.ac.ir
4
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه
AUTHOR
Bribiesca JER, Tórtora JL, Huerta M, Hernández LM, López R and Crosby MM, 2005. Effect of selenium-vitamin E injection in selenium-deficient dairy goats and kids on the Mexican plateau, Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinaria Ezooiecna57.
1
Chorfi Y, Girard V, Fournier A and Couture Y, 2011. Effect of subcutaneous selenium injection and supplementary selenium source on blood selenium and glutathione peroxidase in feedlot heifers. Canadian Veterinary Journal 52:1089–1094.
2
Csilla P and Miklós M, 2013. Myths and facts about the effects of nano-seleniumin farm animals – Mini-Review. European Chemical Bulletin 2 (12):
3
Eekeren SG, van N and Wim G, 2012. Effect of vitamin E and selenium and different types of milk on health and growth of organic goat kids. Tackling the Future Challenges of Organic Animal Husbandry, 2nd OAHC, Hamburg/Trenthorst, Germany.
4
El-Shahat KH and Abdel monem UM 2011. Effects of Dietary Supplementation with Vitamin E and /or Selenium on Metabolic and Reproductive Performance of Egyptian Baladi Ewes under Subtropical Conditions World Applleid Science Journal 12: 1492-1499.
5
Fujihara T and Orden EA, 2014. The effect of dietary vitamin E level on selenium status in rats. Journal of Animal Physiololg and Animal Nutrition 98: 921–927.
6
Habibian M, Ghazi S, Moeini MM and Abdolmohammadi A 2013. Effects of dietary selenium and vitamin E on immune response and biological blood parameters of broilers reared under thermoneutral or heat stress conditions. International Journal of Biometeorology 58: 741-749.
7
Horn MJ, Van Emon ML, Gunn PJ, Eicher SD, Lemenager RP, Burgess J, Pyatt N and Lake SL, 2010. Effects of maternal natural (RRR α-tocopherol acetate) or synthetic (all-racα-tocopherol acetate) vitamin E supplementation on suckling calf performance, colostrum immunoglobulin G, and immune function. Journal of Animal Science 88: 3128-3135.
8
Hu C, Wang X, Zhang S, Xin H and Xia M, 2007. Effect of Nano-Selenium on Growth Performance and Immune Function of Weanling pigs. Bulletin Sci Tech 2007; 2:1-5.
9
Humann-Ziehanka E, Renkob K, Muellerc AS, Roehriga P, Wolfsena J and Gantera M, 2013. Comparing functional metabolic effects of marginal and sufficient selenium supply in sheep. Journal of Traace Element Medical Biology27: 380–390.
10
Joshi A, Kataria N, Kataria AK, Pandey N, Asopa S, Sankhala LN, Pachaury R and Khan S, 2013. Stress related variations in serum vitamin E and C levels of Murrah buffaloes. Journal of Stress Physiology and Biochemistry 9: 28-34.
11
Juniper DT, Givens DI and Bertin G, 2006. Examination of selenium dose response in young lambs receiving an organic selenium. Supplement – Sel-Plex. Alltech’s 22nd Annual Symposium, April 24-26.
12
Huang Y, Sun Y, Zhou J and Guo L 2009. Effects of Organic Selenium Sources on Lamb′s Growth Performance and Its Antioxidative Activities. Animal Husbandary Feed Science
13
Karren BJ, Thorson JF, Cavinder CA, Hammer CJ and Coverdale JA, 2014. Effect of selenium supplementation and plane of nutrition on mares and their foals. Selenium concentrations and glutathione peroxidase. Journal of Animal Science 88: 3 991-997
14
Kojouri GA, Sadeghian S and Mohebbi A, 2012. Effects of Oral Consumption of Selenium Nanoparticles on Chemotactic and Respiratory Burst Activities of Neutrophils in Comparison with Sodium Selenite in Sheep. Biology trace element Research, 146: 160-166,
15
Koyuncu M and Yerlikaya H, 2007. Effect of selenium-vitamin E injections of ewes on reproduction and growth of their lambs. South African Journal of Animal Science, 37: 233-236.
16
Lu Y, Wang X and Dong X, 1996. Effects of Selenium Supplementation in Diet on the Ruminal Digestion and Metabolism of Goats. Acta Agricultural University Henanensis 23: 32-38.
17
Mahgoub RO, 2007. Effects of low concentrations of dietary cobalt on liveweight gains, haematology, serum vitamin B12 and biochemistry of Omani goats. The Veterinary Journal, 173: 131–137.
18
Mahmoud GB, Abdel-Raheem SM and Hussein HA, 2013. Effect of combination of vitamin E and selenium injections on reproductive performance and blood parameters of Ossimi rams. Small Ruminant Research 113: 103-108.
19
Mlambo SS, 2003. Active biomonitoring (ABM) of the Rietvlei Wetland System using antioxidant enzymes, non-enzymatic antioxidants and histopathology as biomarkers. URI: http://hdl.handle.net/ 10210/1192
20
Mohri M, Ehsani A, Norouzian MA, Bami MH and Seifi HA, 2011. Parenteral Selenium and Vitamin E Supplementation to Lambs: Hematology, Serum Biochemistry, Performance, and Relationship with Other Trace Elements Biological Trace Element Research 139: 308-316.
21
Muirhead TL, Wichtel JJ, Stryhn H and McClure JT, 2010. The selenium and vitamin E status of horses in Prince Edward Island. Canadian Veterinary Journal 51: 979–985.
22
Najafnejad B, Aliarabi H and Tabatabaei MM, 2016. Effects of different varies sources of selenium on some hemato-logical parameters and antioxidant responses in Holeshtein dairy cows. Journal of Food Animal Science 26: 45-57.
23
Noori S, 2012. An Overview of Oxidative Stress and Antioxidant Defensive System. Open Access Scientific Reports, 8 http://dx.doi.org/10.4172/scientificreports.413, 8(1): 1-8.
24
Sadeghian S, Kojouri GA and Mohebbi A, 2012. Nanoparticles of Selenium as Species with Stronger Physiological Effects in Sheep in Comparison with Sodium Selenite. Biological Trace Element Research 146: 302-308.
25
Shi L, Yang R, Yue W, Wu J, Zhao P and Lei X, 2009. Comparision of Nano-Selenium and Methionine-Selenium on Growth and Selnium Content in Blood and Tissue of Boer Goats Lamb. Acta Ecologiae Animalis Domastici, 21:31-39.
26
Shi L, Yang R, Yue W, Xun W, Zhang C, Ren Y, Shi Le and Lei F, 2010. Effect of elemental nano-selenium on semen quality, glutathione peroxidase activity, and testis ultrastructure in male Boer goats. Animal Reproduction Science 118: 248–254.
27
Shi L, Xun W, Yue W, Zhang C, Ren Y, Shi Le, Wang Q, Yang R, Lei F, 2011. Effect of sodium selenite, Se-yeast and nano-elemental selenium on growth performance, Se concentration and antioxidant status in growing male goats. Small Ruminant Research 96: 49-52.
28
Shokrollahi B, Mansouri M and Amanlou H, 2013. The Effect of Enriched Milk with Selenium and Vitamin E on Growth Rate, Hematology, Some Blood Biochemical Factors, and Immunoglobulins of Newborn Goat Kids. Biological Trace Element Research 153: 184-190.
29
Soliman EB, Abd El-Moty AKI and Kassab AY, 2012. Combined effect of vitamin E and selenium on some productive and physiological characteristics of ewes and their lambs during suckling period. Egyptian Journal of Sheep Goat Science 7: 31- 42.
30
Stewart WC, Bobe G, Vorachek WR, Pirelli GJ, Mosher WD and Van Saun RG, 2012. Organic and inorganic selenium: II. Transfer efficiency from ewes to lambs. Journal of Animal Science 90: 577-584.
31
Vignola G, Lambertin Li, Giammarco M, Pezz Pi and Mazzone G, 2007. Effects of Se supplementation on growth rate and blood parameters in lambs. Italian Journal of Animal Science 6: 383.
32
Wang LSA, 2011. Recent Advances of Nano-selenium in Animal Nutrition. China Anim Husband Vet Med. 31:21-27.
33
White CL and Rewell L, 2007, Vitamin E and selenium status of sheep during autumn in Western Australia and its relationship to the incidence of apparent white muscle disease. Journal of Experimental Agriculture 47: 535–543.
34
Xu B, Xia M, Hu C and Xu Z, 2005. Effect of nano-selenium on tissue selenium content and GSH-PX activity of broilers. Acta Zoonutrimenta Sinica, 25(1): 113-121.
35
Xun W, Shi L, Yue W, Zhang C, Ren Y and Liu Q, 2012. Effect of High-Dose Nano-selenium and Selenium–Yeast on Feed Digestibility, Rumen Fermentation, and Purine Derivatives in Sheep. Biological Trace Element Research 150: 130-136.
36
Yaghmaei P, Ramin AG, Asri-Rezaei S and Zamaniet A, 2017. Evaluation of glutathione peroxidase activity, selenium, copper, zinc, iron concentrations and weight gain following administration of selenium nano-particles in lambs. Veterinary Research Forum VRF 8: 133-137.
37
Yang R, Shi L, Yue W, Xun W, Zhang C, Ren Y, Zhao P and Lei X, 2009. Effect of nanometer-selenium on the development of reproductive function in prepuberital male Boer goat. Scientia Agricultura Sinica, 42:.2923-2929.
38
Zhang J and Spallholz JEو 2011. Toxicity of Selenium Compounds and Nano-Selenium Particles. General, Applied and Systems Toxicology (book), Wiley Online Library, DOI: 10.1002/9780470744307. gat243, John Wiley & Sons, Ltd.PP: 49-75.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف انرژی قابل متابولیسم و پروتئین خام جیره بر عملکرد رشد، خصوصیات لاشه و راندمان انرژی و پروتئین دوره آغازین بلدرچینهای ژاپنی
زمینه مطالعاتی: سطح مطلوب انرژی و پروتئین مورد نیاز بلدرچین ژاپنی در دورههای مختلف پرورش (آغازین، رشد و پایانی) باعث بهبود رشد و عملکرد پرنده میشود. هدف: بررسی تأثیر سطوح مختلف انرژی قابل متابولیسم و پروتئین جیره بر راندمان انرژی و پروتئین، خصوصیات لاشه و عملکرد بلدرچینهای ژاپنی در دوره آغازین. روش کار: آزمایشی با استفاده از 450 قطعه جوجه یکروزه بلدرچین ژاپنی در قالب طرح کاملاً تصادفی به روش آزمون فاکتوریل 3×3 با 5 تکرار و 10 قطعه جوجه در هر تکرار برای مدت 10 روز بر روی بستر انجام شد. جیرههای آزمایشی شامل 3 سطح انرژی قابل متابولیسم (2700، 2800 و 2900 کیلوکالری در هر کیلوگرم جیره غذایی) و 3 سطح پروتئین خام (24، 25 و 26 درصد) بودند. در پایان دوره آزمایشی یک قطعه پرنده از هر تکرار بهصورت تصادفی انتخاب و جهت بررسی خصوصیات لاشه کشتار گردید. نتایج: پرندگان تغذیه شده با جیره حاوی انرژی 2800 کیلوکالری در کیلوگرم و 24 درصد پروتئین خام، بازدهی لاشه، وزن ران و افزایش وزن کمتر و ضریب تبدیل خوراک بیشتری در مقایسه با پرندگان سایر تیمارها داشتند (05/0>P). افزایش سطح پروتئین جیره تأثیری بر افزایش وزن و ضریب تبدیل خوراک نداشت (05/0<P). بالاترین سطح انرژی (2900 کیلوکالری) موجب کاهش ضریب تبدیل خوراک گردید درحالیکه مصرف 2800 کیلوکالری در کیلوگرم انرژی باعث کاهش وزنگیری در مقایسه با سطح پایین و بالای انرژی گردید (05/0>P). همچنین اثر متقابل بین سطوح انرژی و پروتئین، برای افزایش وزن و ضریب تبدیل خوراک مشاهده گردید (05/0>P). همچنین مشخص گردید که سطح انرژی قابل متابولیسم جیره بر راندمان پروتئین، تأثیر معنیداری داشت (05/0>P)، بهنحویکه پرندگان تغذیه شده با سطح انرژی 2900 کیلوکالری در کیلوگرم، راندمان پروتئین بهتری را نشان دادند. با افزایش انرژی جیره، پروتئین مصرفی به لحاظ عددی کاهش یافت (095/0=P). علاوهبراین سطح پروتئین جیره بر مقدار پروتئین مصرفی تاثیر معنیدار داشت، بهطوریکه با افزایش سطح پروتئین جیره از 24 به 26 درصد، پروتئین مصرفی توسط پرندگان نیز افزایش پیدا کرد (05/0>P). پرندگان تغذیه شده با سطوح انرژی 2700 و 2900 کیلوکالری در کیلوگرم بهترتیب بیشترین و کمترین درصد پروتئین لاشه را داشتند (05/0>P) و پرندگان تغذیه شده با 25 و 26 درصد پروتئین خام بیشترین و پرندگان تغذیه شده با 24 درصد پروتئین خام کمترین درصد رطوبت لاشه را نشان دادند (05/0>P). نتیجهگیری نهایی: نتایج حاصل از این مطالعه پیشنهاد میکند که استفاده از سطح انرژی 2700 کیلوکالری در کیلوگرم و سطح پروتئین خام 24 درصد در جیره آغازین، موجب بهبود عملکرد تولیدی بلدرچینهای ژاپنی میشود. زمینه مطالعاتی: سطح مطلوب انرژی و پروتئین مورد نیاز بلدرچین ژاپنی در دورههای مختلف پرورش (آغازین، رشد و پایانی) باعث بهبود رشد و عملکرد پرنده میشود. هدف: بررسی تأثیر سطوح مختلف انرژی قابل متابولیسم و پروتئین جیره بر راندمان انرژی و پروتئین، خصوصیات لاشه و عملکرد بلدرچینهای ژاپنی در دوره آغازین. روش کار: آزمایشی با استفاده از 450 قطعه جوجه یکروزه بلدرچین ژاپنی در قالب طرح کاملاً تصادفی به روش آزمون فاکتوریل 3×3 با 5 تکرار و 10 قطعه جوجه در هر تکرار برای مدت 10 روز بر روی بستر انجام شد. جیرههای آزمایشی شامل 3 سطح انرژی قابل متابولیسم (2700، 2800 و 2900 کیلوکالری در هر کیلوگرم جیره غذایی) و 3 سطح پروتئین خام (24، 25 و 26 درصد) بودند. در پایان دوره آزمایشی یک قطعه پرنده از هر تکرار بهصورت تصادفی انتخاب و جهت بررسی خصوصیات لاشه کشتار گردید. نتایج: پرندگان تغذیه شده با جیره حاوی انرژی 2800 کیلوکالری در کیلوگرم و 24 درصد پروتئین خام، بازدهی لاشه، وزن ران و افزایش وزن کمتر و ضریب تبدیل خوراک بیشتری در مقایسه با پرندگان سایر تیمارها داشتند (05/0>P). افزایش سطح پروتئین جیره تأثیری بر افزایش وزن و ضریب تبدیل خوراک نداشت (05/0<P). بالاترین سطح انرژی (2900 کیلوکالری) موجب کاهش ضریب تبدیل خوراک گردید درحالیکه مصرف 2800 کیلوکالری در کیلوگرم انرژی باعث کاهش وزنگیری در مقایسه با سطح پایین و بالای انرژی گردید (05/0>P). همچنین اثر متقابل بین سطوح انرژی و پروتئین، برای افزایش وزن و ضریب تبدیل خوراک مشاهده گردید (05/0>P). همچنین مشخص گردید که سطح انرژی قابل متابولیسم جیره بر راندمان پروتئین، تأثیر معنیداری داشت (05/0>P)، بهنحویکه پرندگان تغذیه شده با سطح انرژی 2900 کیلوکالری در کیلوگرم، راندمان پروتئین بهتری را نشان دادند. با افزایش انرژی جیره، پروتئین مصرفی به لحاظ عددی کاهش یافت (095/0=P). علاوهبراین سطح پروتئین جیره بر مقدار پروتئین مصرفی تاثیر معنیدار داشت، بهطوریکه با افزایش سطح پروتئین جیره از 24 به 26 درصد، پروتئین مصرفی توسط پرندگان نیز افزایش پیدا کرد (05/0>P). پرندگان تغذیه شده با سطوح انرژی 2700 و 2900 کیلوکالری در کیلوگرم بهترتیب بیشترین و کمترین درصد پروتئین لاشه را داشتند (05/0>P) و پرندگان تغذیه شده با 25 و 26 درصد پروتئین خام بیشترین و پرندگان تغذیه شده با 24 درصد پروتئین خام کمترین درصد رطوبت لاشه را نشان دادند (05/0>P). نتیجهگیری نهایی: نتایج حاصل از این مطالعه پیشنهاد میکند که استفاده از سطح انرژی 2700 کیلوکالری در کیلوگرم و سطح پروتئین خام 24 درصد در جیره آغازین، موجب بهبود عملکرد تولیدی بلدرچینهای ژاپنی میشود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7279_61ca892fbdd36ce93204d78326ce5865.pdf
2018-02-20
165
181
انرژی
بلدرچین ژاپنی
پروتئین
خصوصیات لاشه
عملکرد
افسون
قدرتی سوجه
1
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
پرویز
فرهومند
parviz.farhomand@yahoo.com
2
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
محسن
دانشیار
mohsen.daneshiar@yahoo.com
3
گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثر سطوح مختلف نانوسلنیوم بر قابلیت هضم و فراسنجه های تخمیری میکروارگانیسمهای شکمبه گوسفند و بز
زمینه مطالعاتی: ذرات کوچکتر نانو، فعالتر از ذرات بزرگتر هستند. اهمیت سلنیوم برای میکروارگانیسمهای شکمبه به طور کامل مشخص نشده است. هدف: آزمایش حاضر بهمنظور بررسی اثر نانوسلنیوم بر فعالیت جمعیت کامل میکروارگانیسمها، باکتریها و قارچهای جدا شده از مایع شکمبه گوسفند و بز انجام گرفت. روش کار: در این آزمایش، مقادیر صفر، 2/0، 4/0 و 6/0 میلیگرم در کیلوگرم نانوسلنیوم به یک جیره پایه استاندارد گوسفند و بز افزوده شد و قابلیت هضم و تخمیر جیرهها در آزمایشگاه با استفاده از مایع شکمبه گوسفند و بز اندازهگیری شد. نتایج: بالاترین قابلیت هضم ماده خشک و الیاف نامحلول در شوینده خنثی (NDF) جیره آزمایشی در گوسفند و بز، مربوط به مقدار ۶/۰ میلیگرم نانوسلنیوم بود که بیشتر از شاهد بود (05/0>P). صرفنظر از سطح نانوسلنیوم، قابلیت هضم ماده خشک و NDF توسط میکروارگانیسمهای گوسفند بیشتر از بز بود. صرف نظر از نوع دام، قابلیت هضم ماده خشک و NDF، با افزایش مقدار نانوسلنیوم، افزایش یافت (05/0P<). پتانسیل تولید گاز توسط میکروارگانیسمهای گوسفند در جیره حاوی ۶/۰ میلیگرم نانوسلنیوم بیشترین مقدار بود و برای تمام سطوح بیشتر از بز بود (05/0>P). قابلیت هضم ماده خشک و NDF توسط باکتریهای شکمبه گوسفند بیشتر از بز بود، بلعکس قابلیت هضم این مواد مغذی توسط قارچهای جدا شده از شکمبه بز بیشتر از گوسفند بود. نتیجهگیری نهایی: بنابراین، استفاده از نانوسلنیوم باعث بهبود هضم و تخمیر مواد مغذی توسط کل میکروارگانیسمها و باکتریهای شکمبه گوسفند و بز شد.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7280_61b5d1953d2dc4f39f422553a04a8de3.pdf
2018-02-20
183
199
باکتریهای شکمبه
قابلیت هضم
قارچهای شکمبه
نانوسلنیوم
مرتضی
چاجی
mortezachaji@gmail.com
1
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
LEAD_AUTHOR
یاسر
منجزی
monjezi05@yahoo.com
2
گروه علوم دامی دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان
AUTHOR
Agrawal AR, Karim SA, Kumar R, Sahoo A and John PJ, 2014. Sheep and goat production: basic differences, impact on climate and molecular tools for rumen microbiome study. International Journal of Current Microbiology and Applied Science 3(1): 684-706.
1
Alexander G, Singh B, Sahoo A and Bhat TK, 2008. In vitro screening of plant extracts to enhance the efficiency of utilization of energy and nitrogen in ruminant diets. Animal Feed Science and Technology 145 (1-4) 229–244.
2
Alimohamady R and Aliarabi H, 2013.Effects of Different Levels of Selenium on Performance, Blood Parameters and Nutrient Digestibility in Mehraban Male Lambs. Iranian Journal of Animal Science Research 5 (1): 48-55.
3
Arthur JR, McKenzie RC and Beckett GJ, 2003. Selenium in the immune system. Journal of Nutrition 133: 1457-1459.
4
Baum MK, Shor-Posner G, Lai S, Zhang G, Lai H, Fletcher MA, Sauberlich H and Page JB, 1997. High risk of HIV-related mortality is associated with selenium deficiency. Acquired Immune Deficiency Syndromes and Human Retrovirology 15:370-374.
5
Blummel M and Orskov ER, 1993. Comparison of in vitro gas production and nylon bag degradability of roughages of predicting feed intake in cattle. Animal Feed Science and Technology 40 (2-3): 109-119.
6
Chaji M, Monjezi Y, Mohammadabadi T and Tavasoli AH, 2014. The effect of using different levels of Nano sellenium on digestive activity of rumen microorganisms in Holstein cow. Proceedings of the Conference of Nanosciences and Nanotechnology. Pyamnoor University of Gorgan, Iran.
7
Chaji M, Monjezi Y and Tavasoli AH, 2015. Effect of Nano-Selenium levels on digestibility in Khuzestan Bufallo. The Proceedings of the first International Conference on Healthy Agriculture, Nutrition and Community (ICANC). Tehran, Iran.
8
Huang B, Zhang J, Hou J and Chen C, 2003. Free Radical Biology and Medicine 35: 805-813.
9
Ivancic J and Weiss WP, 2001. Effect of dietary sulphur and selenium concentrations on selenium balance of lactating Holstein cows. Journal of Dairy Science 84: 225-232.
10
Jones GA, McAllister TA, Muir AD and Cheng KJ, 1994: Effects of sainfoin (Onobrychis viciifolia Scop.) condensed tannins on growth and proteolysis by four strains of ruminal bacteria. Applied and Environmental Microbiology 60: 1374-1378.
11
Kamra DN, 2005. Rumen microbial ecosystem. Current Science 89: 1-10.
12
Koenig KM, Rode LM, Cohen RDH and Buckley WT, 1997. Effects of diet and chemical form of selenium on selenium metabolism in sheep. Journal of Animal Science 75:817–827.
13
Kumar N, Garg AK and Mudgal V, 2008. Effect of different levels of selenium supplementation on growth rate, nutrient utilization, blood metabolic profile, and immune response in lambs. Biological Trace Element Research 126: S44-56.
14
Leeson S and Summers JD, 2001. Scott's Nutrition of the Chicken. 4th edition. University of Guelph, Canada.
15
Macpherson A, 1994. Selenium, vitamin E and biological oxidation. In: Cole DJ, Garnsworthy PJ (Eds.) Recent advances in animal nutrition. Oxford, Butterworth and Heinemann, pp. 3-30.
16
McSweeney CS, Palmer B and Krause DO, 2000. Tannins in Livestock and Human Nutrition: Rumen microbial ecology and physiology in sheep and goats fed a tannin-containing diet. Proceedings of an International Workshop, Adelaide, Australia. pp. 140-145.
17
Menke KH and Steingass H, 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research and Development 28: 6-55.
18
Mervyn L, 1985. The Dictionary of minerals. The complete guide to minerals and mineral therapy. Lothian Publishing, Melbourne, Australia. pp. 173-177.
19
Mills GC, 1957. Hemoglobin metabolism I. Glutathione peroxidase, an erythrocyte enzyme which protect haemoglobin from oxidative damage. Journal of Biological Chemistry 229: 189–197.
20
Min BR, Pinchak WE Hernandez K, Hernandez C, Hume ME, Valencia E and Fulford JD, 2012. Effects of plant tannin supplementation on animal responses and in vivo ruminal bacterial populations associated with bloat in heifers grazing wheat forage. The Professional Animal Scientist 28: 464–472.
21
Mohammadabadi T, Danesh Mesgaran M, Chaji M and Tahmasebi R, 2012. Evaluation of the effect of fat content of sunflower meal on rumen fungi growth and population by direct (quantitative competitive polymerase chain reaction) and indirect (dry matter and neutral detergent fiber disappearance) methods. African Journal of Biotechnology 11(1): 179-183.
22
Navarro-Alarcon M and Lopez-Martinez MC, 2000. Essentiality of selenium in the human body: Relationship with difference diseases. Science of the total Environment 249: 347-371.
23
Orpin CG, 1977. The rumen flagellate Piromonas communis: its life-history and invasion of plant material in the rumen. Journal of General Microbiology 99: 107-117.
24
Ørskov ER and McDonald I, 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science and Technology, 92: 499–503.
25
Peng, D, Zhang J, Liu Q and Tayler EW, 2007. Size effect elemental selenium nanoparticles (Nano-se) at supranutritional levels on selenium accumulation and glutathione S-transferase activity. Journal of Inorganic Biochemistry 101(10): 1457-1463.
26
Peterson PJ and Spedding DJ, 1963. The excretion by sheep of 75 selenium incorporated into red clover: the chemical nature of the excreted selenium and its uptake by three plant species. New Zealand Journal of Agricultural Research 6: 13–23.
27
Rock MJ, Kincaid RL and Carsens GE, 2001. Effect of prenatal source and level of dietary selenium on passive immunity and thermometabolism of newborn lambs. Small Ruminant Research 40: 129-138.
28
SAS Institute Inc., 2008. SAS User's Guide. Version 9.2. SAS Institute, Cary, NC, USA.
29
Sirohi SK, Pandey N, Goel N, Singh B, Mohini M, Pandey P and Chaudhry PP, 2009. Microbial activity and ruminal methanogenesis as affected by plant secondary metabolites in different plant extracts. International Journal of Civil and Environmental Engineering 1: 52-58.
30
Serra AB, Nakamura K, Matsui T, Harumoto T and Fujihara RI, 1994. Inorganic selenium for sheep: II. Its influence on rumen bacterial yield, volatile fatty acid production and total tract digestion of timothy hay. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences 7: 91–96.
31
Surai PF, 2006. Selenium in nutrition and health, Nottingham University Press, Nottingham. pp. 363-588.
32
Surai PF, 2002. Selenium in poultry nutrition. 1. Antioxidant properties, deficiency and toxicity. World’s Poultry Science Journal 58(3): 333-347.
33
Suttle NF, 2012. Mineral Nutrition of Livestock, 4th Edition. Cambridge, CABI, Massachusetts.
34
Tilley JMA and Terry RA, 1963. A two stage technique for in vitro digestion of forage crops. British Grassland Society 18:104-111.
35
Van Soest P, Robertson JB and Lewis BA, 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science 74: 3583-3597.
36
Wang C, Liu Q, Yang WZ, Dong Q, Yang XM, He DC, Zhang P, Dong KH and Huang YX, 2009. Effects of selenium yeast on rumen fermentation, lactation performance and feed digestibilities in lactating dairy cows. Livestock Science 126: 239-244.
37
Wang H, Zhang J and Yu H, 2007. Elemental selenium at nano size possesses lower toxicity without compromising the fundamental effect on selenoenzyms: Comparison with selenomethionine in mice. Free Radical Biology and Medicine 42: 1524-1533.
38
Zhang Y, Gao W and Meng Q, 2007. Fermentation of plant cell walls by ruminal bacteria, protozoa and fungi and their interaction with fibre particle size. Archives of Animal Nutrition 61(2):114–125.
39
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی زیستی اقتصادی پرورش جوجههای گوشتی بر اساس نسبتهای مختلف جنسیتی
زمینۀ مطالعاتی: پرورش جوجههای گوشتی به تفکیک جنسیت یا به نسبتهای مختلف جنسیتی موضوعی است که در تحقیقات مختلف، نتایج متفاوتی دربرداشته است. هدف: این تحقیق به منظور مقایسۀ شاخصهای زیستی اقتصادی پرورش نسبتهای مختلف جنسیتی جوجههای گوشتی از روز یازدهم پرورش انجام گردید. روش کار: آزمایش با استفاده از 180 قطعه جوجه گوشتی سویۀ راس 308 در 5 گروه مختلف نسبت جنسی (گروه 1: 25 درصد نر و 75 درصد ماده؛ گروه 2: 50 درصد نر و 50 درصد ماده؛ گروه 3: 75 درصد نر و 25 درصد ماده؛ گروه 4: 100 درصد ماده و گروه 5: 100 درصد نر) با 3 تکرار و 12 جوجه در هر تکرار در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام گردید. نتایج: بر اساس نتایج، خوراک مصرفی فقط در دورۀ رشد (11 تا 24 روزگی) بین گروههای مختلف جنسیتی تفاوت معنیداری داشت (05/0P<) و گروههای 1 و 3 بیشترین مقدار مصرف را نشان دادند. در دورۀ رشد و کل دوره (11 تا 42 روزگی)، گروه حاوی نر خالص، بیشترین افزایش وزن روزانه و بهترین ضریب تبدیل غذایی را داشت (05/0P<). از میان پارامترهای لاشه، فقط بازده لاشه تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی قرار گرفت و گروه 3 بیشترین بازده لاشه (06/73%) را دارا بود (05/0P<). شاخص اروپایی جوجههای گوشتی در گروههای 5 و 3 بیشترین مقدار را نسبت به گروههای دیگر نشان داد (05/0P<). سود محاسبه شده در 9 حالت ارزیابی اقتصادی (سه روش تعیین قیمت شامل میانگین قیمت سال 1394، میانگین قیمت بدترین و بهترین دورۀ پرورش دو سال 1393 و 1394) و 3 روش فروش (فروش مرغ زنده، مرغ کشتار شده و به تفکیک قطعات لاشه) با کاهش درصد جوجههای نر در گروههای مورد مطالعه روند نزولی داشت (05/0P<) و کاهش تا 50 درصد نر، تفاوت معنیداری را نشان نداد. نتیجهگیری نهایی: با توجه به نتایج حاصل از مقایسۀ سود روشهای مختلف ارزیابی اقتصادی میتوان پرورش مخلوط را تا زمانی که درصد نرها از 50 درصد پایینتر نباشد، توصیه نمود.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7311_9e43e36c2844d74020f0ddb4166bf792.pdf
2018-02-20
201
216
ارزیابی زیستی اقتصادی
راس 308
جنسیت
جوجه گوشتی
هادی
عربی
hadiarabi65@gmail.com
1
گروه علوم دامی دانشگاه آزاد اسلامی واحد مراغه
AUTHOR
یوسف
مهماننواز
2
گروه علوم دامی دانشگاه آزاد اسلامی واحد مراغه
LEAD_AUTHOR
علی
نوبخت
anobakht20@yahoo.com
3
گروه علوم دامی دانشگاه آزاد اسلامی واحد مراغه
AUTHOR
Aviagen, 2014. Ross broiler management handbook. http://es.aviagen.com/assets/Tech_Center/Ross_Broiler/Ross-Broiler-Handbook-2014-EN.pdf.
1
Benyi K, Tshilate TS, Netshipale AJ and Mahlako KT, 2015. Effects of genotype and sex on the growth performance and carcass characteristics of broiler chickens. Tropical Animal Health and Production 47(7):1225-1231.
2
Fischer GJ, 1985. The behavior of chicken. In: Bailliere Tindal. Pp. 454-487.
3
Groen AF, Jiang X, Emmerson DA and Vereijken A, 1998. A deterministic model for the economic evaluation of broiler production systems. Poultry Science 77:925-933.
4
Henrry MH and Burke WH, 1998. Sexual dimorphism in broiler chicks embryos and embryonic muscle development in late incubation. Poultry Science 77:728 - 736.
5
Iyeghe–Erakpotobor GT, 2001. Genetic, environmental and nutritional influencing growth and reproduction of rabbits in the semi-humid tropics. PhD Thesis Ahmadu Bello University, Zaria, Nigeria, Pp.160.
6
Jaafari Sayyadi AR and Ohadi Hayeri A, 2002. Effects of sex on production and carcass traits of broiler chicken. Chekavak. 10(2): 146-154. (In Persian).
7
Jia R, Bao YH, Zhang Y, Ji C, Zhao LH, Zhang JY, Gao CQ and Ma QG, 2014. Effects of dietary α-lipoic acid, Acetyl-L-carnitine, and sex on antioxidative ability, energy, and lipid metabolism in broilers. Poultry Science 93: 2809–2817.
8
Laseinde EA, Oluyemi JA, 1994. Effect of sex separation at the Finisher phase on the comparative growth performance, carcass characteristics and breast muscle development between male and female broiler chicken. Nigerian Journal of Animal Production 21(1-2):1-8.
9
Marcu A, Vacaru-Opriş I, Dumitrescu G, Ciochina LP, Marcu A, Nicula M and Kelciov B, 2013. The Influence of the genotype on Economic Efficiency of broiler chicken’s growth. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies 46(2):339-346.
10
Mosavi SM, Shahir MH, Lotfolahian H, Afsarian O and Hoseini SA, 2012. Determination of economic level of protein and Lysine in broilers diet. Animal Science Researches 22(1): 63-79. (In Persian).
11
Ojedapo LO, Akinokun O, Adedeji TA, Olayeni TB, Ameen SA, and Amao SR, 2008. Effect of strain and sex on carcass characteristics of three commercial broilers reared in deep litter system in the derived savannah area of Nigeria. World Journal of Agricultural Sciences 4(4): 487-491.
12
Rondelli S, Martinez O and Garcia PT, 2003. Sex effect on productive parameters, carcass and body fat composition of two commercial broiler lines. Revista Brasileira de Ciência Avícola, 5(3): 169-173.
13
Seyyed Mostafavi M. 2012. Challenges of poultry industry in Iran and ways to deal with them. Center for Strategic Research of Iran, Tehran, Iran. (In Persian).
14
Taghan Agh O, Dastar B, Shams Shargh M, Hashemi SR and Mirshekar R, 2011. The influence of sex, dietary protein level and black seed on thigh meat oxidative stability chickens. Proceedings of the first national conference on modern topics in agriculture. Saveh, Iran. (In Persian).
15
Verapeen DS and Driver MF, 2000. Separate sex growing of Ross 308 Broilers and effects on broiler performance and carcass quality. Science and Technology Research Journal 4: 145-152.
16
Young LL, Northcutt JK, Buhr RJ, Lyon CE and Ware GO, 2001. Effects of age, sex, and duration of postmortem aging on percentage yield of parts from broiler chicken carcasses. Poultry Science 80:376–379.
17
Zamani P, Ighani V, Rezayazdi K, Zarafrouz F and Amirabadi M, 2012. Performance of male and female Aryan and Ross broiler chicks fed diluted diets. Animal Science researches 22 (3): 89-98. (In Persian).
18
Zuowei S, Yan L, Yuan L, Jiao H, Song Z, Guo Y and Lin H, 2011. Stocking density affects the growth performance of broilers in a sex-dependent fashion. Poultry Science 90 :1406–1415.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پرتوتابی گاما، الکترون، مایکروویو و مادون قرمز بر هضمپذیری شکمبهای و برونتنی پروتئین کنجاله سویا
زمینه مطالعاتی: پرتوتابی منابع پروتئین گیاهی می تواند کیفیت آن را بهبود بخشد. هدف: این مطالعه بهمنظور مقایسه اثرات پرتوتابی گاما، الکترون، مایکروویو و مادون قرمز برتجزیهپذیری شکمبهای، قابلیت هضم برونتنی و بخشهای مختلف پروتئین کنجاله سویا انجام شد. روش کار: تجزیه پذیری، قابلیت هضم برونتنی و بخشهای مختلف پروتئین بهترتیب با تکنیک کیسه های نایلونی با استفاده از چهار رأس گوسفند نر بالغ دارای فیستولای شکمبه، روش سه مرحلهای و روش پروتئین و کربوهیدرات خالص کرنل اندازهگیری شد. گروههای آزمایشی شامل 1) کنجاله خام بهعنوان شاهد، 2) کنجاله پرتوتابی شده با دز 50 کیلوگری گاما، 3) کنجاله پرتوتابی شده با دز 45 کیلوگری الکترون ، 4) کنجاله پرتوتابی شده با مایکروویو در قدرت 800 وات به مدت 4 دقیقه و 5) کنجاله پرتوتابی شده با مادون قرمز بهمدت 30 ثانیه بود. نتایج: بیشترین بخش سریع تجزیه (a) پروتئین کنجاله سویا در کنجاله خام و کمترین آن در کنجاله پرتوتابی شده با مادون قرمز وجود داشت (05/0>P). بیشترین و کمترین بخش کند تجزیه (b) بهترتیب در کنجاله پرتوتابی شده با مایکروویو و کنجاله خام مشاهده شد. کمترین ثابت نرخ تجزیه (c) متعلق به کنجاله سویای عملآوری شده با روشهای پرتوتابی و بیشترین آن به کنجاله سویای خام تعلق داشت (05/0>P). تجزیهپذیری مؤثر پروتئین خام کنجاله سویا تحت تأثیر روشهای مختلف عملآوری قرار نگرفت (05/0<P). اثر روشهای مختلف عملآوری بر بخشهای B1، B2و B3 پروتئین خام کنجاله سویا معنیدار بود (05/0>P)، ولیکن بر بخشهای A و C اثری نداشت (05/0<P). بیشترین مقدار قابلیت هضم پروتئین کنجاله سویا در تیمارهای پرتوتابی شده و کمترین مقدار آن در کنجاله خام وجود داشت (05/0>P). نتیجه گیری نهایی: در بین عملآوریهای مورد مطالعه، تفاوت زیادی در تجزیه پذیری پروتئین خام دیده نشد ولیکن با توجه به نتایج قابلیت هضم بهنظر میرسد پرتوتابی مادون قرمز و الکترون برای عملآوری کنجاله سویا بهتر عمل میکند.
https://animalscience.tabrizu.ac.ir/article_7312_363f9de82c83e6204130558d6e5cd456.pdf
2018-02-20
217
230
کنجاله سویا
پرتوتابی
تجزیهپذیری
قابلیت هضم برونتنی
بخشهای مختلف پروتئین
پروین
شورنگ
pshawrang@nrcam.org
1
پژوهشگاه علوم و فنون هستهای، پژوهشکده کشاورزی هسته ای، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
سادیه
جلیلیان
poultsci@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
فرشید
فتاح نیا
f.fatahnia@ilam.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
علی اصغر
صادقی
sadeghi_ali@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران، تهران، ایران
AUTHOR
علی اشرف
مهرابی
aamehrabi@ilam.ac.ir
5
گروه علوم دامی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
Alibakhshi I, Nikkhah A, Shawrang P and Zareii A, 2009. Study of electron beam irradiation effect on protein degradability parameters and antinutritional components in soybean. Animal Science and Research Journal 5(2): 125-132 (In Persian).
1
AOAC, 2000. Official Methods of Analysis. 17th ed. Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, MD, USA.
2
Aldrich CJ, Ingram S and Coldfelter JR, 1997. Assessment of postruminal amino acid digestibility of roasted and exruded whole soybeans with the precision-fed rooster assay. Journal of Animal Science 75: 3046-3051.
3
Awawdeh MS, Titgemeyer EC, Drouillard JS, Beyer RS and Shirley JE, 2007. Ruminal degradability and lysine bioavailability of soybean meals and effects on performance of dairy cows. Journal of Dairy Science 90: 4740–4753.
4
Ebrahimi-Mahmoudabadi SR and Taghinejad-Roudbaneh M, 2011. Investigation of electron beam irradiation effects on anti-nutritional factors, chemical composition and digestion kinetics of whole cotton, soybean and canola seeds. Radiation Physic and Chemistry 80: 1441-1447.
5
Fattah A, Sadeghi AA, Nikkhah A, Chamani M and Shawrang P, 2013. Degradation characteristics of infrared processed barley grain and its feeding effects on ruminal pH of sheep. Iranian Journal of Applied Animal Science 3(3): 451-457.
6
Fathi Nasri MH, France J, Danesh Mesgaran M and Kebreab E, 2008. Effect of heat processing on ruminal degradability and intestinal disappearance of nitrogen and amino acids in Iranian whole soybean. Livestock Science 113: 43–51.
7
Fellows PJ, 2000. Food Processing Technology: Principles and Practice, Third Edition. CRC press, Oxford, UK.
8
Folawiyo YL and Apenten RKO, 1997. The effect of heat- and acid-treatment on the structure of rapeseed albumin (napin). Food Chemistry 58: 237-243.
9
Food and Drug Administration, 1997. Irradiation in the production, processing and handling of food. Federal Reg 51: 13376-13399.
10
Fox DG, Tedeschi LO, Tylutki TP, Russell JB, Van Amburgh ME, Chase LE, Pell AN and Overton TR, 2003. The Cornell net carbohydrate and protein system model for evaluating herd nutrition and nutrient excretion. Animal Feed Science and Technology 112: 29–78.
11
Licitra C, Hernandez TN and Van Soest PJ, 1996. Standardization of procedures for nitrogen fractionation of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology 57: 347-358.
12
McNiven MA, Prestlokken E, Mydland LT and Mitchell AW, 2002. Laboratory procedure to determine protein digestibility of heat-treated feedstuffs for dairy cattle. Animal Feed Science and Technology 96: 1–13.
13
Mjoun K, Kalscheur KF, Hippen AR and Schingoethe DJ, 2010. Ruminal degradability and intestinal digestibility of protein and amino acids in soybean and corn distillers grains products. Journal of Dairy Science 93: 4144–4154.
14
Murray RK, Granner DK, Mayes PA and Rodwell VW, 2003. Harper's Biochemistry. 26th ed., McGraw-Hill, New York, USA.
15
Mustafa AF, McKinnon JJ, Christensen DA and He T, 2002. Effects of micronization of flaxseed on nutrient disappearance in the gastrointestinal tract of steers. Animal Feed Science and Technology 95: 123-132.
16
Oliveira MEC and Franca AS, 2002. Microwave heating of foodstuffs. Journal of Food Engineering 53: 347-359.
17
Ørskov ER and McDonald IM, 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science 92: 499-503.
18
Rosa J and Barbosa-Canovas GV, 2003. Nonthermal preservation of foods using combined processing techniques. Critical Reviews in Food Science and Nutrition 43: 265-285.
19
Sadeghi AA and Shawrang P, 2006. Effects of microwave irradiation on ruminal protein and starch degradation of corn grain. Animal Feed Science and Technology 127: 113-123.
20
Sadeghi AA, Nikkhah A and Shawrang P, 2005. Effects of microwave irradiation on ruminal degradation and in vitro digestibility of soybean meal. Animal Science 80: 369–375.
21
Sadeghi AA, Nikkhah A and Shawrang P, 2007. Effects of microwave irradiation on ruminal protein degradation and intestinal digestibility of cottonseed meal. Animal Feed Science and Technology 106: 176–181.
22
SAS, 1996. User’s Guide. SAS Institute, Cary, NC, USA.
23
Shawrang P, Nikkhah A, Zare-Shahneh A, Sadeghi AA, Raisali G and Moradi Shahrebabak M, 2007. Effects of gamma irradiation on protein degradation of soybean meal in the rumen. Animal feed Science and Technology 134: 140–151.
24
Van Soest PJ, 1994. Nutritional Ecology of the Ruminants. 2nd Edition. Cornell University Press. NY. USA.
25